Читайте также:
|
|
Выявление генов ЬТ, £Т, УТ1 токсинов и гена оперона инвазивности энтеробактерий с использованием экспериментальных ПЦР тест-систем разработки ФГУН ННИИЭМ им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора (авторская разработка).
1. Готовили реакционную смесь для амплификации из расчета на 1 пробу:
2,5 мкл праймеров по 5-15 пмоль/мл каждого; 5 мкл 10-кратного реакционного буфера 2,5 мкл dNTP по 1мМ каждого; 1 мкл Tag-пoлимepaзы 0,5 е.а. 29 мкл деионизованной воды
2. После добавления Тад-полимеразы, которое производилось в последнюю очередь,тщательно перемешивали смесь пипетированием.
3. Добавляли по 40 мкл смеси во все пробирки, подготовленные для амплификации, наносили по 25-30 мкл минерального масла
4. Вносили по 10 мкл анализируемых образцов и контролей в соответствующие пробирки под слой масла.
5. Пробирки с реакционными смесями помещали в амплификатор и проводили амплификацию в режиме матричного регулирования процесса.
1) программа амплификации фрагмента оперона инвазивности (1пу) и фрагмента гена шигаподобного токсина (УТ1):
«горячий старт» | 94°С 3 мин. | 1 цикл |
денатурация ДНК | 94°С 1 мин. 55°С 1 мин. 72°С 1 мин. | 30 циклов |
отжиг праймера | ||
синтез фрагмента | ||
завершение синтеза | 72°С 5 мин. | 1 цикл |
2) программа амплификации фрагмента гена термостабильного токсина (ST):
|
Выявление бактерий рода Shigella и энтероинвазивных Escherichia с использованием экспериментальной тест-системы «Amply-Inv» совместной разработки ФГЪГН ННИИЭМ им. им. акад. И.Н. Блохиной Роспртребнадзора и ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора.
Тест-система основана на принципе «буст»-амплификации с использованием внешних и внутренних пар праймеров.
1. В микропробирки согласно количеству исследуемых образцов и контролей вносили по 5 мкл нижней реакционной смеси (раствор праймеров 5-15 пмоль/мл каждого; раствор dNTP- по 1мМ каждого). На поверхность нижнего слоя наносили расплавленный воск, остужали до образования восковой перегородки.
2. Не повреждая перегородку, в каждую пробирку вносили по 10 мкл верхней реакционной ПЦР-смеси следующего состава: 0,05 мл фермента Taq- полимераза, 0,45 мл деионизованной воды, 0,5 мл 5-кратного буферного раствора (0,335М трис-HCl рН 8,0; 0,0125 М MgCl2; 0,625 г/л БСА; 40 % глицерин; 0,0625 % ксиленцианол).
3. Вносили в пробирки по 30 мкл стерильного минерального масла.
4. Добавляли в пробирки в соответствии с маркировкой под слой масла по 10 мкл исследуемых проб, положительных и отрицательных контролей.
5. Проводили реакцию на амлификаторе «Терцик» МС2» согласно программе в режиме активного прецезионного регулирования процесса:
«горячий старт» | 95°С Змин | 1 цикл |
денатурация ДНК | 95°С 15 сек. 65°С 15 сек. 72°С 15 сек. | 10 циклов |
отжиг праймера | ||
синтез фрагмента | ||
денатурация ДНК | 95°С 11 сек. 55°С 11 сек. 72°С 11 сек. | 30 циклов |
отжиг праймера | ||
синтез фрагмента | ||
завершение синтеза | 72°С 5 мин. | 1 цикл |
Выявление бактерий рода Shigella и энтероинвазивных Escherichia с использованием тест-системы «АмтиСенс-100-R Shigella species» ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора.
ПЦРдетекция бактерий рода Shigella и энтероинвазивных Escherichia с использованием тест-системы «АмплиСенс-100-R Shigella species» проводилась согласно инструкции производителя.
Выявление бактерий родов Salmonella, Campylobacter, Y. enterocolitica с использованием тест-систем производства ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора.
ПЦР-детекция бактерий родов Salmonella, Campylobacter и Yersinia enterocolitica с использованием тест-систем производства ЦНИИЭ Роспотребнадзора проводилась в соответствии с наставлением по применению.
Выявление бактерий родов Salmonella с использованием ПЦР тест-системы фирмы «Ниармедик» Москва.
После адаптации тест системы (см. главу Формирование материальной базы для проведения исследований исследование проводили по следующей схеме:
1. Приготовить в микропробирке объемом 1,5 мл (тип «Эппендорф») реакционную смесь, для этого смешать следующие компоненты в расчете на 1 исследование:
5 мкл деионизованной воды
2,5 мкл 10-кратного буфера (67 мМ Трис рН 8,8; 16,6 мМ (№[4)2804; 6,7 мМ 1\^С12; 10 мМ 2-меркаптоэтанола; 6,7 мМ ЭДТА; 1мкл раствора БСА; 1,5 мкл раствора сШТР;
3 мкл раствора праймеров — по 1,5 мкл каждого;
2. Разнести реакционную смесь в 0,5 мл микропробирки (тип «Эппендорф») по 13 мкл, согласно количеству исследуемых образцов и контролей.
3. Наслоить на поверхность каждой реакционной смеси по 30 мкл стерильного вазелинового масла.
4. Внести в пробирки под масло по 10 мкл проб и контролей согласно маркировке.
5. Поместить пробирки в амплификатор, денатурировать нагреванием при 94° С в течение 4 мин.
6. На стадии паузы добавить в каждую пробирку по 2 мкл разведенной непосредственно перед употреблением бидистиллированной водой Tag- полимеразы (2 единицы активности).
7. Провести амплификацию по следующей программе,
горячии старт | 94°С 4 мин. | 1 цикл |
денатурация ДНК | 94°С 1 мин. 57°С 1 мин. 72°С 1 мин. | 35 циклов |
отжиг праймеров | ||
синтез фрагмента |
Выявление генов LT, ST, VT1 и VT2 токсинов энтеробактерий с использованием ПЦР тест-систем серии "E.coli tox " ФГУН ЦНИИЭ |
Роспотребнадзора.
ПЦР-детекция генов ЬТ, БТ, УТ1 и УТ2 токсинов энтеробактерий с использованием ПНР тест-систем серии "Е.соН 1:ох " (ЦНРШЭ Роспотребнадзора) проводилась в соответствии инструкций производителя.
Детекция фрагментов генов патогенности холерных вибрионов у энтеробактерий с использованием ПЦР тест-системы производства НИИММО РФ г. Киров.
После адаптации тест системы (см. главу Формирование материальной базы для проведения исследований)исследование проводили по следующей схеме:
1. В микропробирки согласно количеству исследуемых образцов и контролей вносили по 5 мкл нижней реакционной смеси (раствор праймеров 2,5мкл каждого; раствор 2,5 мкл). На поверхность нижнего слоя наносили расплавленный воск, остужали до образования восковой перегородки. Для каждой пробы готовили по пробирке с нижней реакционной смесью для выявления гена с1хА, детерминирующего синтез субъединицы А холерного энтеротоксина и с нижней реакционной смесью для выявления гена 1:срА, кодирующего синтез основной субъединицы пил ей адгезии.
2. Не повреждая перегородку, в каждую пробирку вносили по 10 мкл универсальной верхней реакционной ПЦР-смеси производства ЦНИИЭ Роспотребнадзора.
3. Вносили в пробирки по 30 мкл стерильного минерального масла.
4. Добавляли в пробирки в соответствии с маркировкой под слой масла по 10 мкл исследуемых проб, положительных и отрицательных контролей.
5. Проводили реакцию на амлификаторе «Терцик»МС2» согласно программе в режиме активного прецезионного регулирования процесса:
горячий старт | 95°С 5 мин. | 1 цикл |
денатурация ДНК | 95°С 20 сек. 53°С 20 сек. 72°С 20 сек. | 40 циклов |
отжиг праймеров | ||
синтез фрагментов | ||
завершение синтеза | 72°С 2 мин. | 1 цикл |
Дата добавления: 2015-07-20; просмотров: 134 | Нарушение авторских прав
<== предыдущая страница | | | следующая страница ==> |
Диагностика хеликобактерной инфекции | | | Амплификация фрагментов генома H.pylori. |