История

МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ

«Новгородский Государственный Университет им Ярослава Мудрого»

(НовГУ)

Великий Новгород

Институт медицинского образования

Кафедра общей и факультетской хирургии

«УТВЕРЖДАЮ»

заместитель директора института

медицинского образования

______________Сулиманов Р.А.

“______”_______________2011г.

МЕТОДИЧЕСКОЕ ПОСОБИЕ К ПРАКТИЧЕСКОМУ ЗАНЯТИЮ

ДЛЯ ПРЕПОДАВАТЕЛЕЙ И СТУДЕНТОВ

Специальность: 060101 – “Лечебное дело”.

Дисциплина: Общая хирургия с курсом анестезиологии.

Тема: Асептика и антисептика. История вопроса. Хирургическая и госпитальная инфекция. Виды современной антисептики. Асептика - метод хирургической работы. Экзогенная и эндогенная инфекция. Профилактика воздушной и капельной инфекции. Профилактика контактной и капельной инфекции.

Время: 4 часа

СОГЛАСОВАНО: Начальник УМО ИМО НовГУ _____________И.В.БОГДАШОВА“___”_______________2011 г.	РАЗРАБОТАЛ: проф. кафедры общей и факультетской хирургии ________________В.П.Байдо доцент кафедры общей и факультетской хирургии _________________Д.А.ШВЕЦОВ “___”_______________2011г.
	ПРИНЯТО на заседании кафедры общей и факультетской хирургии _______зав.каф.проф.В.П.БАЙДО “____”_____________2011г.

Великий Новгород – 2011г.

1.ЦЕЛЬ РАБОТЫ:

1.Ознакомить студентов с историей вопроса.

2.Разбор понятий «хирургическая» и «госпитальная» инфекции.

3.Разбор видов современной антисептики.

4.Разбор понятия «асептика».

5.Разбор понятий «экзогенная» и «эндогенная» инфекции.

6.Разбор профилактики воздушной инфекции.

7.Разбор профилактики капельной инфекции.

8.Разбор профилактики контактной инфекции.

2.ОСНАЩЕНИЕ ЗАНЯТИЯ: таблицы, слайды, оборудование перевязочной и операционной, видеозаписи операций.

3.ТЕОРЕТИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ТЕМЫ ЗАНЯТИЯ:

ИСТОРИЯ

Понятие «антисептика» было введено английским военным хирургом Pringl в 1750 г. на основе наблюдений за противогнилостным эффектом минеральных кислот, употреблявшихся в то время для обеззараживания нечистот. Однако методы борьбы с заражением, нагноением ран и гнилостным процессом в них существовали и до введения этого понятия.

Чистота рук врача и всех предметов, соприкасающихся с раной, были всем известным требованием уже среди врачей древней Индии, Палестины и Греции, которые предполагали, что контакт нечистых рук с раной может вести к нагноению. Гиппократ при перевязке и промывании ран использовал только кипяченую воду, чистые полотняные, хорошо всасывающие отделяемое раны повязки, пропитывал их вином для усиления обеззараживающего действия.

Антисептические средства при лечении ран применяли Мондевиль, Ги де Шолиак (1363), используя для этих целей спирт, уксус, деготь, скипидар, ртутные препараты. Только этим можно объяснить тот факт, что в те далекие времена раны нередко заживали первичным натяжением. Позднее эти принципы были преданы забвению. Нагноение ран рассматривали как нечто непреложное, как почти необходимое явление, потому что среди разнообразных форм раневой инфекции гноеродная выглядела наиболее безобидной.

До начала бактериологической эры (1878) почти половина больных, перенесших оперативное вмешательство, погибала от рожистого воспаления, пиемии, газовой гангрены или дифетерии раны. Даже у таких хирургов, как Бильрот, 50% больных погибало после мастэктомии и струмэктомии. По данным Malgaigne (цит. по W. V. Brunn), в середине XIX столетия в Париже в течение 5 лет умерло 300 из 560 оперированных. У Н. И. Пирогова в 1852-1853 гг. на 400 больших операций летальность составила 159 человек.

В начале 40-х годов XIX века Н. И. Пирогов применял в своей практике лечения ран растворы карболовой кислоты, нитрата серебра, сульфата цинка, спирт, настойку йода и др. Он твердо верил в возможность борьбы с инфекцией. В своем вы- дающемся труде «Начала общей военно-полевой хирургии» он писал: «...Всеобщее вооружение против госпитальных миазм не превышает человеческих сил... От нас, кажется, недалеко то время, когда тщательное изучение травматических и госпитальных миазм даст хирургии другое направление».

Венгерский врач-акушер И. Земмельвейс интуитивно понимал большую опасность, которую представляют недостаточно чистые руки хирурга для заживления ран. Он наиболее близко подошел к созданию метода антисептики, стал систематически применять для дезинфекции рук, инструментов, родовых путей и всего, что используется при родовспоможении, хлорную воду. С ее помощью обеззараживалось все, что приходит в соприкосновение с родовыми путями женщины. Эти мероприятия позволили значительно снизить летальность от послеродового сепсиса.

Вводя в кровь кроликам секрет из матки родильниц, заболевших горячкой, И. Земмельвейс экспериментально доказал наличие в нем заразного начала, которое может передаваться через грязные руки персонала и инструменты от одной пациентки к другой. Он понимал, что матка родившей женщины представляет собой огромную рану и проникновение туда инфекции часто угрожает родовым сепсисом. Именно ему принадлежит заслуга в разработке стройной системы превентивной антисептики (1847). И. Земмельвейс на 17 лет раньше Д. Листера начал с превентивной антисептики, рекомендуя акушерам и всем его помощникам тщательно мыть руки хлорной известью перед исследованием женщины и обмывать все, что соприкасается с родовыми путями, раствором хлорной извести, чтобы предотвратить и побороть заразу.

Д. Листер начал свои работы по антисептике с местного применения антисептических растворов, как это делали в то время некоторые хирурги, и лишь позднее пришел к применению метода превентивной антисептики, аналогичной по идее методу И. Земмельвейса. Экспансивный И. Земмельвейс написал письма всем профессорам-акушерам Европы, в которых предупреждал, что обратится ко всему обществу и потребует суда над теми акушерами, которые не моют руки перед исследованием родовых путей и тем самым переносят заразное начало, приводящее к смерти. Сам И. Земмельвейс умер от сепсиса, развившегося после ранения пальца во время операции. Взгляды И. Земмельвейса получили распространение и дальнейшее развитие в России. Хотя И. Земмельвейсу удалось сократить детскую смертность в руководимой им клинике в Вене на 1/3 его способ не получил широкого признания среди хирургов. Пренебрежение к контактной инфекции было обусловлено всеобщим интересом к борьбе с воздушной инфекцией, которая, по нашим настоящим представлениям, играет меньшую роль в инфицировании ран по сравнению с загрязнением рук хирурга, инструментов и перевязочных материалов, контактирующих с раной.

Под влиянием работ Л. Пастора о причинах гниения и брожения Д. Листер предложил свой антисептический способ стерилизации с помощью карболовой кислоты. Используя 2,5-5% раствор карболовой кислоты, он значительно улучшил свои результаты и первый добился полного излечения 10 больных с открытыми переломами без нагноения. При лечении ран он начал применение масляных растворов карболовой кислоты, которыми смачивал повязку. В последующем он понял, что только местного применения карболовой кислоты недостаточно, и стал применять пульверизацию 2,5% раствора карболовой кислоты для обеззараживания воздуха во время операции. Руки и операционное поле также мыли раствором карболовой кис- лоты, этим раствором промывали рану во время и после окончания операции. Инструменты во время операции находились в 2—2,50/0 растворе фенола.

Таким образом, было сформулировано основное положение: «Ничто не должно касаться раны, не будучи обеспложенным». Все элементы антисептического метода Листера, за исключением пульверизации воздуха, были сформулированы И. Земмельвейсом применительно к акушерской практике. Первые результаты применения научно обоснованного метода антисептики в хирургии были опубликованы Д. Листером в 1867 г. В этой работе он не упоминает об исследованиях И. Земмельвейса и других авторов, применявших для обеззараживания ран раз- личные антисептические вещества, в том числе и растворы карболовой кислоты. В своих более поздних сообщениях он указывал, что узнал об исследованиях И. Земмельвейса только в 1893 г.

Первым русским хирургом, опубликовавшим результаты применения антисептического метода, был И. И. Бурцев. О последовательном успешном применении антисептического метода Листера для лечения ран на фронте во время Русско-турецкой войны 1877 г. сообщил К. К. Рейер. На X Международном конгрессе врачей он впервые сформулировал основные принципы хирургической обработки ран с использованием «предохранительно-антисептического» метода Листера. Развитие и внедрение антисептики в России успешно проходили благодаря трудам С. П. Коломинна, Н. В, Склифосовского, И. Н. Новацкого и др.

Окончательные предпосылки для разработки надежного способа стерилизации были созданы с развитием бактериологии. Асептика и антисептика вышли на первый план врачебных интересов. В области хирургии этот прогресс связан с именами немецких хирургов Trendelenburg (1882), Bergman и Schimmelbusch (1885), Esmarch и Neuber.

Планомерная, проводимая под бактериологическим контролем асептика наряду с анестезиологией является важнейшим принципом современной хирургии.

Асептика включает в себя мероприятия, которые обеспечивают стерильные условия работы и уменьшают риск попадания микроорганизмов в стерильную зону. К ней относятся все способы стерилизации и сохранения стерильности инструментов, перевязочного и шовного материала, катетеров. С этих позиций в больницах и особенно в операционных блоках целесообразно выделять септические и асептические зоны, которые отделяются друг от друга по рабочему принципу. С помощью асептических мероприятий необходимо уменьшить опасность распространения внутрибольничной инфекции из септической зоны; асептическая зона должна быть свободна от микроорганизмов, патогенных для человека.

Антисептика объединяет все мероприятия и способы, благодаря которым уменьшается количество микробов на поврежденных н неповрежденных участках человеческого тела (кожа и слизистые). Это достигается снижением вероятности переноса возбудителя инфекции, прерыванием процесса его размножения, а также санированием инфицированных зон. В зависимости от принципа действия метода различают механическую, физическую, химическую, биологическую и смешанную антисептику. Эти методы тесно переплетаются в практическом их применении.

4. ВОПРОСЫ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ИСХОДНОГО УРОВНЯ ЗНАНИЙ:

1.Перечислить основные даты связанные с историей вопроса.

2.Дать определение понятию «хирургическая» инфекция.

3.Дать определение понятию «госпитальная» инфекция.

4.Перечислить виды современной антисептики.

5.Дать определение понятию «асептика».

6.Дать определение понятию «экзогенная» инфекция.

7.Дать определение понятию «эндогенная» инфекция.

8.Перечислить методы профилактики воздушной инфекции.

9.Перечислить методы профилактики капельной инфекции.

8.Перечислить методы профилактики контактной инфекции.

5. СПРАВОЧНЫЙ МАТЕРИАЛ:

Операционный блок – сердце хирургического отделения. От того, как поставлена работа операционных, зависит здоровье, а нередко и жизнь больных. Его структуры и организация работы подчинены основной задаче – обеспечению асептики при выполнении оперативных вмешательств, что невозможно, если не будут уничтожены все пути передачи инфекции: воздушно-капельный, контактный и имплантационный. Это может быть достигнуто при строжайшем соблюдении требований, предъявляемых к условиям работы в операционной. Все они направлены к одному – строжайшему выполнению приказов и инструкций, регламентирующих претворение в жизнь правила – все, что касается раны должно быть стерильным. Это может быть выполнено при слаженной работе всего персонала операционно-перевязочного блока, начиная от санитарки и заканчивая заведующим отделением. Своевременная уборка операционной, стерилизация, обработка рук перед операцией и многое другое позволят выполнить основную задачу – возвращение здоровья и жизни людей. Вопросы, связанные со стерилизацией инструментов и шовного материала, а также операционного белья, были в центре внимания многих хирургов. Н.И.Пирогов, Дж.Листер, И.Ф.Земмельвейс предлагали антисептики для стерилизации инструментов. Так Дж.Листер стерилизовал инструменты путем погружения их в 5% раствор карболовой кислоты. На смену метода Листера пришел метод Бергмана – применение для стерилизации физических методов – высокой температуры, кипячения, текучего пара.

Со временем способы стерилизации стали совершенными. В настоящее время с успехом выполняется основной закон асептики – все, что соприкасается с раной должно быть стерильным. Существовавшие рутинные способы стерилизации инструментов, шовного материала и операционного белья уступили место современным наиболее надежным – стерилизации паром под давлением, сухожаровому методу, химическому методу.Стерилизация достигается с помощью физических и химических методов. К физическим методам относятся термическая и лучевая стерилизация, химические включают в себя стерилизацию окисью этилена, обработку надуксусной кислотой, а так- же химиотермическую обработку. Кроме этого, для создания асептических условий в операционных или в изоляторах используют фильтрацию воздуха с целью очищения его от бактерий.

Наиболее надежными способами стерилизации считаются термические способы, лучевая стерилизация и стерилизация окисью этилена. При термических способах стерилизация про- изводится водяным паром в автоклаве при температуре ПО- 140*С либо используется сухой жар в сухожаровых стерилизаторах (шкафах) при температуре 160-200°С.

При стерилизации высокой температурой необходимо различать следующие рабочие фазы

1. Время нагревания - от начала подогрева до достижения предписанной температуры (по термометру) в рабочей камере. При стерилизации паром время нагревания состоит из времени разогрева (до достижения температуры кипения) и времени достижения температуры стерилизации.

2.Время уравновешивания - от момента достижения температуры стерилизации в рабочей камере до момента выравнивания ее во всем стерилизуемом материале

(рис 1) Это время зависит от типа стерилизатора, вида и числа стерилизуемых предметов, а также от уровня необходимой температуры стерилизации Время отмечают либо по показаниям термометра, либо косвенно, по состоянию индикаторов стерилизации

3.Время уничтожения - время, необходимое для уничтожения микробов,
продолжительность которого предписана инструкцией в зависимости от температуры
стерилизации Надежная стерильность достигается путем увеличения времени
уничтожения на 50%/

Истинное время стерилизации в полезном пространстве состоит из времени уравновешивания, времени уничтожения и времени дополнительной безопасности, обеспечивающего надежность стерилизации

4.Время охлаждения - от момента прекращения нагревания до снижения
температуры до 80°С (при стерилизации сухим жаром) и до 60°С (при стерилизации в
автоклаве)

Автоклавирование проводится в диапазоне температур от ПО до 140°С. Вследствие этого существует возможность выбора условий обработки стерилизуемых веществ, предметов и лекарственных форм.

Все предметы, которые не выдерживают высокой температуры жаровой стерилизации и для которых температура пара не является повреждающей, должны стерилизоваться автоклавированием. К ним относятся перевязочный материал, резиновые и синтетические предметы, бумажные фильтры, закрытые ампулы и банки с водосодержащими препаратами. После окончания процесса стерилизации закрывают щели (перфорации) в металлических биксах. Инструменты, стеклянные и резиновые предметы укладывают на металлическую сетку, которую перед стерилизацией обертывают плотной тканью и пергаментной бумагой с индикатором. Пустые сосуды стерилизуют открытыми в горизонтальном положении. Жидкости стерилизуют в герметично закрытых сосудах, так как испарение воды приводит к изменению концентрации. Жидкости с пониженной точкой кипения, например этанол, а также термолабильные препараты в автоклаве стерилизовать нельзя. По сравнению с сухожаровыми шкафами автоклав сложнее в обслуживании. Он взрывоопасен, поэтому автоклавирование может производить только подготовленный персонал.

Сухожаровая стерилизация. При сухожаровой стерилизации необходимо разогревание стерилизуемых объектов, позволяющее уничтожить все содержащиеся на них микроорганизмы. Так как горячий воздух, в отличие от водяного пара, служит только переносчиком тепла, температура стерилизуемых предметов должна достигать 160-200°С.

При температуре 180°С время стерилизации составляет 15 мин. При определении времени стерилизании необходимо принимать во внимание время уравновешивания, которое в основном продолжительнее, чем при стерилизации паром.

В аппаратах объемом до 30 л перемешивание воздуха обеспечивается за счет конвекции, а в больших аппаратах еще и механически. Термические перераспределения обеспечиваются за счет поступления нагретого воздуха через специальный клапан в нижней части стерилизатора, а его выход -через верхний клапан. При подъеме воздух отдает тепло стерилизуемым объектам. При механическом перемешивании столб воздуха перемещается в полезное пространство стерилизатора и его циркуляция обеспечивается с помощью небольшого ротора.

Путем сухожаровой стерилизации можно обрабатывать все термостабильные, негорючие материалы из стекла, металла или фарфора. Стерилизуемые объекты закладывают чистыми и сухими в холодный аппарат. Заполнение стерилизатора не должно быть плотным, чтобы обеспечить достаточную циркуляцию воздуха. Так как в ряде аппаратов старого типа дверцы остаются открытыми уже после включения аппарата, необходимо помнить, что добавление новых материалов и предметов для стерилизации недопустимо. Это ведет к снижению температуры, уменьшению времени воздействия и к отсутствию стерилизующего эффекта.

При появлении очагов тления, которые чаще всего возникают при неправильной закладке, необходимо тотчас же отключить энергию; стерилизатор нельзя открывать, так как поступление кислорода может вести к воспламенению. Несмотря на наличие автоматики и программированного управления, автоклавы и сухожаровые шкафы недопустимо оставлять без присмотра персонала.

Нельзя стерилизовать горячим воздухом перевязочный материал, резину, катетеры, большинство видов бумаги, материалы из пластика, воду и водосодержащие жидкости.

Лучевая стерилизация. Этот вид стерилизации осуществляется ионизирующим излучением большой энергетической мощности, проникающим на различную глубину в стерилизуемый материал. В практических целях используют бета- и гамма -облучение. Для стерилизации гамма-излучением (быстрые электроны) или лучами ""Со необходима доза облучения не менее 2,5 мрад (25000 Гр). Для каждого определенного процесса стерилизации доза облучения должна быть подобрана экспериментально.

Химическая стерилизация. Быстрое развитие медицины, связанное с увеличением числа используемых искусственных материалов, а также с ростом обеспеченности больниц аппаратами, которые трудно стерилизовать традиционными методами, способствовало появлению новых методов стерилизации. Под методами химической стерилизации (холодной) понимают стерилизацию с помощью окиси этилена или надуксусной кислоты. Термин «холодная стерилизация» применим ко всем способам, при которых температура не превышает температуры коагуляции белка (от 45 до 60°С). Это не означает, что некоторые способы не требуют более высокой температуры; предполагается, что стерилизующий агент и стерилизуемые средства не разлагаются.

Стерилизация окисью этилена. Окись этилена, оказывающая бактерицидное действие за счет алкилирования протеинов бактерий, растворима в воде, спиртах, эфирах. При нормальных атмосферных условиях это бесцветный газ с неприятным эфироподобным запахом. Точка кипения окиси этилена - 10,7°С. Токсическое действие ее проявляется в головных болях, недомогании, тошноте, а при сильных отравлениях-рвоте и остановке дыхания.

После стерилизации оставшийся газ удаляют через выпускники камеры в вытяжные трубы. При больших количествах газа для обезвреживания используют капсулы с хлоридом кальция. Контроль за качеством стерилизации проводят с использованием индикатора окиси этилена.

Индикатор окиси этилена: раствор I -16 г глицерола с добавлением этилена (70% по объему) до 100 мл; раствор II- 17 г бромида лития и 0,17 г бромкрезолового пурпурного с добавлением этанола до 100 мл. Жидкости должны быть свежее приготовленными. Как индикатор используется смесь из 20 мл раствора 1 и10 мл раствора 2.

С помощью газовой стерилизации следует обрабатывать лишь те объекты, которые не выдерживают стерилизацию в автоклаве или сухожаровом шкафу. Это связано с тем, что некоторые грибы переживают воздействие окиси этилена.

В окиси этилена стерилизуют: катетеры из искусственных материалов, шланги, протезы, эндоскопы, кардиостимуляторы, отдельные узлы аппаратов искусственного кровообращения, а также наркозную и дыхательную аппаратуру. Следует при этом обратить внимание, что различные материалы требуют различного времени для удаления окиси этилена.

Стерилизация надуксусной кислотой. Стерилизация надуксусной кислотой допустима, но не относится к надежным способам, так как она не обеспечивает уровня стерилизации, необходимого для клинической практики. Поэтому не следует использовать надуксусную кислоту вместо термических методов в тех случаях, когда они возможны. Ее бактерицидные свойства основаны на сильном окислительном действии.

Надуксусная кислота используется в виде 400/0 раствора (Wofasteril). В России препарат надуксусной кислоты выпускается под названием «дезоксон-1». Надуксусная кислота не стабильна и разрушается при высокой температуре. Срок хранения ее в холодильнике - 6 мес. Нельзя хранить ее вместе с легковоспламеняющимися жидкостями. Оригинальные упаковки для ее хранения имеют вентильное закрытие, не пропускающее кислород и не допускающее утечки надуксусной кислоты при транспортировке. Работающие с надуксусной кислотой должны надевать защитные очки, резиновые перчатки и фартук. Разбавленный раствор состоит из 2 г надуксусной кислоты на 100 мл растворителя (хранение на холоде свыше 30 дней). Разбавленный раствор после однократного применения становится непригодным для дальнейшего применения вследствие уменьшения его концентрации.

Время воздействия установлено экспериментально, однако оно должно быть не менее 5 мин при 0,4% концентрации надуксусной кислоты, не менее 10 мин при 0,2% и не менее 15 мин при 0,10/0 концентрации раствора. Способ более надежен при некотором превышении экспозиции. Обычно для стерилизации используют 0,2% раствор в течение 10 мин. Пузырьки воздуха необходимо удалять путем шевеления материала или полоскания через систему трубок

Этим способом можно стерилизовать катетеры, трубки из пластмассы, кардиостимуляторы, искусственные протезы клапанов сердца, хирургический шовный материал, флаконы с глазными каплями, упаковки с радием. Изделия из железа и других металлов подвергаются при этом сильной коррозии; изделия из нержавеющей или анодированной стали можно стерилизовать в надуксусной кислоте.

По окончании стерилизации материал прополаскивают в стерильной дистиллированной воде или стерильном изотоническом растворе хлорида натрия в асептических условиях. Отмывку производят до тех пор, пока не прекращается голубое прокрашивание бумажных индикаторов йодида калия промывной жидкостью. После отмывки все стерилизующиеся объекты должны быть незамедлительно использованы

В качестве первой помощи при отравлениях надуксусной кислотой необходимо проведение следующих мероприятий. Дезоксон (Wofasteril) с кожи тотчас и основательно должен быть удален проточной водой. Можно рекомендовать обработку мылом и содой. Глаза немедленно промывают водой, после чего производят обработку стерильным изотоническим раствором хлорида натрия или 2% раствором бикарбоната натрия. При попадании дезоксона внутрь необходимо в первые 10 мин вызвать рвоту или сделать промывание желудка, назначить обильное питье (вода, лучше молоко или молоко с сырым яйцом).

Хирургические инструменты из коррозионно-стойких металлов и изделия из пластмассы (резины) можно стерилизовать в 6% растворе перекиси водорода.

Подтверждение стерильности. Вещества и предметы считаются стерильными, если они в упакованном виде обработаны термическим путем или облучением и если эффект стерилизации подтвержден индикатором стерильности.

На этикетке, прикрепленной к стерилизованному объекту, должно быть обозначение с указанием вида стерилизации и даты: «Стерилизация паром -20.02.84.». Для стерилизации надуксусной кислотой в таких обозначениях нет необходимости, так как все предметы после отмывки должны быть сразу использованы.

Упаковка и размещение стерилизуемых объектов. Необходимо проводить различия между понятиями «стерильная» и «защитная» упаковка. Стерильная упаковка предполагает, что предметы в ней стерилизуются, транспортируются и хранятся.до момента использования. Ее открывают непосредственно перед применением. Если для этих целей используют бумагу, то необходима еще и защитная упаковка. Защитная упаковка предохраняет от механических повреждений, загрязнения и влаги и таким образом представляет собой второй слой упаковки над стерильной. Стерильная упаковка рассматривается как нестерильная после открытия и после случайного повреждения защитного слоя. Для большинства стерильных упаковок опасна.избыточная влага.

Основные правила по проведению стерилизации и ее документация. Основное правило для любого используемого метода стерилизации заключается в максимальном уничтожении микро- организмов уже перед началом стерилизации. Таким образом, стерилизовать следует только чистые инструменты. Специальный для защиты персонала стерилизуемый материал перед каждой очисткой проходит еще и дезинфекцию. Весь материал перед стерилизацией должен быть высушен, что имеет особо важное значение при проведении сухожаровой стерилизации. Исключение в этом плане представляет стерилизация окисью этилена.

За весь процесс стерилизации отвечает заведующий отделением, в котором размещена вся служба стерилизации. Другие ответственные сотрудники стерилизационного отделения (например, медицинские сестры, обслуживающий персонал) должны работать под контролем руководителя. Они должны иметь удостоверения о том, что они ознакомились с техникой безопасности и с методикой стерилизации (заводская инструкция, методика дезинфекции, очистка, упаковка, транспортировка и размещение). Ответственные должны знать все источники возможных ошибок при проведении всего процесса стерилизации, они должны быть компетентными во всей документации.

Документы должны включать: паспорт аппарата; описание устройства и принципов работы аппарата; инструкцию по эксплуатации аппарата; результаты испытаний; перечень выявленных недостатков в работе аппарата и случаев некачественной стерилизации; отметки о проводимом ремонте; заключение органов санитарной инспекции и котлонадзора.

Кроме этого, необходимо тщательно вести контрольный журнал с отметками о каждой проведенной стерилизации. Оценка работы стерилизаторов осуществляется органами санитарной инспекции, но чаще всего ответственными за стерилизацию.

Оценка качества работы аппарата необходима перед началом эксплуатации, после каждого ремонта, после каждой претензии к качеству стерилизации и минимум каждые 2 года. Если в наличии нет специальных индикаторов, то в качестве биологического теста можно использовать спорообразующий микробный материал в пробирках.

Текущий контроль стерилизации:

1) оценка надежности индикаторов; они необходимы исключительно для установления различий между простерилизованными и непростерилизованными объектами и являются свидетельством действенности метода; получение точных данных о состоянии всех параметров стерилизации с помощью только индикаторов невозможно;

2) оценка электрической нагрузки стерилизатора;

3) определение условий содержания стерилизационных жидкостей;

4) контроль за специфическими параметрами, максимальной температурой, влажностью и парциальным давлением газа при стерилизации окисью этилена.

Централизованная стерилизация. Объединение и централизация стерилизации в одной хирургической клинике приносят пользу в отношении экономии как времени, так и средств. Все подразделения должны централизованно обеспечиваться стерильным материалом. При использовании современной техники с концентрацией больших количеств машин и аппаратов децентрализованная их стерилизация представляет большие трудности. Централизованная стерилизация освобождает обслуживающий персонал от целого ряда нагрузок.

При небольших и средних по размерам стерилизуемых объектах такую службу можно разместить рядом с операционным блоком, не нарушая его работы. Для больших лечебных учреждений вполне допустимо и удобно размещение ее этажом выше или ниже операционного отделения. В этом случае транспортировка обеспечивается с помощью лифта. Размещение центральной стерилизационной в отдельном здании гарантирует лучшую функциональную загруженность, экономичность и большую продуктивность.

Централизованное обеспечение стерильным материалом может быть реализовано в трех вариантах. Все отделения большой больницы, а также принадлежащие ей поликлинические службы обеспечиваются стерильным материалом из центрального блока. При другом варианте они имеют задание складировать и распределять промышленный стерильный материал. Наконец, большая центральная стерилизационная может обеспечивать стерильным материалом все учреждения здравоохранения на большой территории - в радиусе 50 км. При организации централизованного обеспечения стерильным материалом предполагается, что потоки материалов различных категорий (контаминированный, очищенный, стерильный) принципиально никогда не пересекаются.

Один человек в течение одного 8-часового рабочего дня может выполнить укладку и очистку 164 наборов инструментов для различных типов операций с общей массой до 565 кг. Он должен лишь контролировать полностью автоматическую работу устройства, а в промежутках выполняет любые другие задания.

Хранение шлридев и канюль, Шприцы иканюли, простерилизованные в центральной стерилизационной, хранят в упаковках. Простерилизованные кипячением шприцы лучше всего хранить в хорошо высушенном стеклянном стерильном биксе, заполненном стерильной марлей и плотно закрывающемся. Хранение стерильных шприцев, канюль и инструментов в 80% спирте нежелательно, так как споры в спирте могут сохраняться и не погибают. Если есть возможность, желательно пользоваться одноразовыми канюлями и шприцами.

Дата добавления: 2015-07-20