Диагностика псориаза

·Симптом «стеаринового пятна» - при гроттаже (поскабливании)псориатических высыпаний, поверхность высыпных элементов становится интенсивно белой, отделяются стеариновые чешуйки.

·Симптом «псориатической пленки» («терминальной пленки») – при снятии чешуек с псориатических папул появляется блестяще красная поверхность.

·Симптом Ауспитца (феномен «кровяной росы», феномен точечного кровотечения) – при гроттаже (поскабливании) псориатических высыпаний, после феномена «стеаринового пятна» и «терминальной пленки», появляется точечное кровотечение.

Прогрессивная стадия псориаза:

·Симптом Пильнова (ободок Пильнова) – красный ободок гиперемии по периферии псориатических папул, не покрытых в этих очагах чешуйками.

·Симптом Кебнера – при повреждении или раздражении кожи, на месте травмы появляются свежие высыпания.

Стадия регресса:

·Симптом Воронова (псевдоатрофический ободок) – вокруг псориатических папул – блестящее, светлое кольцо слегка морщинистой кожи.

12. Исследование на акантолитические клетки

первые цитологический метод диагностики пузырчатых дерматозов предложил в 1947 г. А. Тцанк для обследования больных вульгарной пузырчаткой. Этот метод незаменим при дифференциальной диагностике пузырчатки и герпетиформного дерматоза Дюринга.

С поверхности дна свежего пузыря скальпелем или путем прикладывания стерильного обезжиренного стекла берут материал, фиксируют на протяжении 1 мин. метиловым спиртом, высушивают при комнатной температуре и красят по Романовскому-Гимзе: наносят на 20-25 мин. свежеприготовленный раствор азурэозина, потом смывают краситель дистиллированной водой и высушивают мазки при комнатной температуре. После приготовления и окрашивания препараты исследуют под микроскопом при увеличении 10x40. Акан- толитические клетки меньше нормальных эпителиальных клеток, округлой формы, с большим ядром, которое окрашено в интенсивно-фиолетовый или фиолетово-синий цвет и занимает почти всю клетку. В ядре видно два или несколько больших ядрышка более светлой окраски. Цитоплазма словно оттеснена к периферии, резко базофильная, ближе к ядру - светло-голубая. Количество клеток разное: от единичных до большого числа с меньшими изменениями, без четкого ободка концентрации. Их рассматривают как переходные формы от нормальных эпителиальных клеток к акантолитическим.

13. Люминесцентная диагностика грибковых заболеваний

Диагноз устанавливается на основании данных культуральной диагностики и микроскопии (микроспорумы образуют вокруг волоса чехол из мелких спор, которые, в отличие от возбудителя инфильтративно-нагноительной трихофитии, располагаются не цепочками, а хаотично-мозаично). Важное дифференциально-диагностическое значение имеет зеленоватое свечение пораженных микроспорумом волос в лучах Вуда.

Отрубевидный лишай. Отрубевидное шелушение в сомнительных случаях можно выявить путем поскабливания пятна ногтем: роговые массы снимаются при этом в виде стружки. Другой способ - смазывание пятна и окружающей кожи спиртовым раствором йода или анилиновой краски: в результате интенсивного впитывания раствора разрыхленным роговым слоем пораженная кожа окрашивается значительно ярче, чем здоровая (проба Бальцера). В диагностике отрубевидного лишая волосистой части головы имеет важное значение люминесцентный метод: под лучами Вуда (ультрафиолетовые лучи кварцевой лампы, пропущенные через стекло, импрегнированное солями никеля) в затемненном помещении пятна приобретают красновато-желтое или бурое свечение.

14. Забор патологического материала для выявления чесоточного клеща, железицы, патогенных грибов

Исследование на чесотку – лабораторное определение чесоточного клеща в соскобах роговых чешуек с чесоточных ходов или элементов сыпи (папул, везикул). Забор патологического материала производится из межпальцевых промежутков, с запястий, локтевых сгибов, ягодиц, живота, внутренних поверхностей бедер путем нанесения на очаг капли вазелинового масла и поскабливания элемента стерильным скальпелем до выступания капелек крови (около 6 движений). Полученный соскоб переносится на стекло и рассматривается под микроскопом. Диагноз чесотки считается подтвержденным при обнаружении зрелых клещей размером 0,2-0,4 мм, их экскрементов, личинок или яиц.

зятие патологического материала

Успех лабораторного исследования микозов во многом зависит от правильного взятия патологического материала. Поскольку грибы способны поражать различные органы че­ловека, при подозрении на микоз необходимо исследовать различный патологический материл. В дерматологической практике чаще всего приходится иметь дело с микозами, при которых исследованию на грибы подлежат кожные чешуйки, волосы, ногти. При подозрении на глубокие и системные микозы может возникнуть необходимость лабораторной диа­гностики на грибы мокроты, промывных вод, мочи, фекалий, гноя, отделяемого слизистых оболочек, крови, кусочков орга­нов и биопсированной ткани.

В очагах поражения на коже, из которых предполагается брать патологический материал, за несколько дней или не­дель необходимо прекратить всякое лечение. Следует иметь в виду, что использование слабых дезинфицирующих раство­ров или даже индифферентных средств может помешать ис­следованию. Непосредственно перед забором патологическо­го материала очаг поражения необходимо обработать 96% спиртом или раствором ксилола. Материал лучше всего брать со свежих, но уже полностью развившихся очагов по­ражения. Кожные чешуйки необходимо соскабливать с пе­риферии очагов, грибы здесь встречаются чаще всего как в виде мицелия, так и спор. Кожные чешуйки снимаются скальпелем, корочки - эпиляционным пинцетом. Наряду с чешуйками желательно забирать небольшую часть прилега­ющей к очагу поражения здоровой кожи, так как в этих на внешний вид нормальных участках можно обнаружить боль­шое количество элементов гриба. При дисгидротических вы­сыпаниях для анализа следует использовать покрышки пу­зырьков и крупные, с трудом отделяющиеся чешуйки на гра­нице очагов поражения и здоровой кожи. Поверхностные корочки и чешуйки в центре кольцевидных высыпаний мало пригодны для исследования, так как элементы грибов здесь имеются непостоянно и их бывает трудно отличить от фраг­ментов жирового распада тканей. Скутулы при фавусе удоб­нее брать эпиляционным пинцетом, они очень богаты гриба­ми во всех своих частях. В случаях подозрения на грибко­вое поражение пушковых волос, их необходимо извлекать эпиляционным пинцетом по возможности вместе с чешуй­кой. Грубые роговые массы с подошв срезают скальпелем или лезвием безопасной бритвы.

У больных микозами волосистой части головы поражен­ные волосы извлекают эпиляционным пинцетом. Для исследования необходимо брать короткие, перекрученные, изогну­тые в виде дуги или запятой, а также длинные, но покрытые чехлом в основании, волосы. При подозрении на фавус необ­ходимо помнить о том, что волосы не обламываются, но ста­новятся тусклыми, безжизненными, седоватыми. Там, где обломанные волосы плохо видны невооруженным глазом, нужно пользоваться лупой и собирать с очагов поражения чешуйки, поскольку коротко обломанные волосы могут иметь вид едва заметной черной точки, заложенной в толще роговой чешуйки. Если пораженные волосы имеют вид черных точек, то их извлекают на поверхность кожи или острым концом скальпеля, или препаровальной иглой.

Пораженные волосы, взятые для микроскопического ис­следования, желательно разложить на предметном стекле на фоне черной бумаги. В этом случае они резко отличаются от здоровых волос серым и тусклым цветом.

При взятии материала необходимо исследовать каждый, даже маленький очаг облысения, особенно у взрослых, так как грибковое поражение на голове у них нередко сочетает­ся с мелкими участками рубцовой алопеции.

У больных с инфильтративно-нагноительной формой ми­коза волосистой части головы и области роста бороды и усов (kerion, паразитный сикоз) очаги поражения часто покрыты массивными корками. В этих случаях отдельные поражен­ные волосы выявить трудно, они чаще встречаются в свежих высыпаниях, по краю очагов поражения, в более глубоких от­делах кожи. Нередко они выталкиваются из волосяных фолликулов вместе с гноем при надавливании на очаг пора­жения. Волосы желательно брать вместе с гноем, затем по­местить на чашку Петри, часовое или предметное стекло, и отделить волос от гноя.

Соскобы с поверхностных очагов пораженных ногтевых пластинок делают скальпелем, утолщенные ногтевые пластинки срезают скальпелем или маникюрными кусачками;

подногтевой гиперкератоз можно получить с помощью пре­паровальной иглы. Для взятия материала из глубоких сло­ев через «окошечко» в ногтевой пластинке иногда пользуются бормашиной. При паронихиях необходимо брать гной из-под ногтевых валиков; при отсутствии гноя — соскабливать материал с соприкасающихся поверхностей ногтевой плас­тинки и валиков.

Жидкий патологический материал собирают асептично в стерильную посуду, чешуйки кожи, ногтя и волосы – на листочки простой или мягкой пергаментной бумаги.

Отделяемое со слизистых оболочек для посева берут тампоном из гигроскопической ваты, который затем помеща­ют в сухую стерильную пробирку или пробирку с 2 мл пи­тательной среды (сусло Сабуро). Материал со слизистых оболочек рта и зева берут вначале с внутренней поверхнос­ти щек, неба, затем языка, тщательно протирая тампоном спинку и корень, а в заключение – круговым движением из зева. Для микроскопии соскобы налетов беловато-серовато­го цвета со слизистых оболочек берут ложечкой Фолькмана или предметным стеклом. Материал из влагалища получают из заднего свода; с головки полового члена – из области ве­нечной борозды.

Материал из наружного слухового прохода берут петлей или тампоном, который помещают в пробирку.

При необходимости полученный патологический мате­риал доставляют в лабораторию в специальной таре или металлических биксах. Поступивший в лабораторию материал исследуют в течение 1 ч после взятия при хранении в условиях комнатной температуры или не более чем через 3 ч при хранении в холодильнике при температуре 4 °С.

В запаянных пробирках или пипетках жидкий патологи­ческий материал сохраняется до высыхания довольно долго, грибы в волосах и чешуйках, завернутые в бумажные пакеты (типа аптечных порошков), могут сохраняться месяцы и да­же годы.

Кровь для исследования на грибы берут из локтевой вены в количестве 5 – 10 мл и вносят сразу с колбочку с жидкой питательной средой или равным количеством цитрата натрия.

При необходимости исследования на грибы биопсийного материала его помещают в стерильную чашечку Петри и используют для микроскопии, посевов на питательные среды и приготовления гистологических препаратов.

15. Забор патологического материала и исследование на гонококки и трихомонады

Техника взятия материала из очагов воспаления. У мужчин необходимо исследовать выделения из уретрального канала и парауретрапьних протоков, а в некоторых случаях - из прямой кишки, глотки и миндалин. Перед взятием материала из уретры больной не должен выпускать мочу на протяжении 4-5 часов. Участок головки полового члена вокруг наружного отверстия уретры вытирают ватным тампоном, смоченным в стерильном физиологическом растворе хлористого натрия. Первые капли выделений, которые появляются при нажатии на уретру, вытирают, а с дальнейших - делают мазки или используют их для высева на питательную среду. При незначительных выделениях или их отсутствии предварительно проводят массаж уретры, потом - соскоб со слизистой переднебоковых стенок ложкой Фолькмана, а для посевов - бактериологической петлей. Для этого дистальная часть полового члена берется между третьим и четвертым пальцами левой руки, указательным и большим пальцами той же руки расширяют губки внешнего отверстия уретры. Тупая ложка или петля вводится в уретру приблизительно на 3-4 см. Материал из парауретральных протоков получают надавливанием на них.
При обследовании женщин обязательно берут мазки из уретры, цервикального канала, влагалища. Из прямой кишки, парауретральных протоков, больших вестибулярных желез, а также из глотки материал забирают при необходимости. Перед забором материала вульву протирают сухим стерильным тампоном, потом уретру массируют со стороны влагалища, прижимая ее к лобковой кости. Ложкой Фолькмана или желобоватым зондом берут материал, вводя инструмент в уретру на 1,5-2 см и стараясь получить выделения легким поскабливанием передней и боковых стенок уретры. Манипуляцию проводят осторожно, чтобы не поранить слизистую. Если при надавливании на переднюю часть уретры появляются выделения из парауретральных протоков, их берут ложкой Фолькмана и делают мазки. Секрет из больших вестибулярных желез осторожно выдавливают пальцами, один из которых введен во влагалище, а второй размещается на нижней трети большой половой губы. После того, как шейка матки открыта зеркалом Куско и протерта сухим ватным тампоном, выделения берут длинным гинекологическим пинцетом, продвигая его в цервикальный канал на 2 см.
Из канала прямой кишки материал для исследований забирают тупой ложкой Фолькмана.
У девочек материал из влагалища берут без зеркал ушной ложкой или желобоватым зондом через гименапьное отверстие.
Беременные женщины исследуются на гонорею и трихомониаз в любой период беременности, только во второй половине беременности материал берут, не вводя пинцет в цервикальный канал.
Для бактериоскопического исследования материал наносят на предметные стекла и равномерно распределяют на их поверхности. Для бактериологического исследования материал засевают в пробирках, которые содержат питательную среду.
Мазки и пробирки отправляют в лабораторию с направлением, подписанным врачом. В направлении указывают фамилию и инициалы обследуемого лица, исследовательский прием, номер карточки амбулаторного или стационарного больного, обследуемый участок, дату забора материала, фамилию врача.
В мазках, окрашенных метиленовым синим, исследуемых под микроскопом с естественным или искусственным освещением, гонококки четко определены, бобовидной формы, парные, располагаются внутриклеточно и внеклеточно, темно-синего цвета. При окрашивании мазков по методу Грама гонококки будут оранжево-красными.
Идентификацию гонококков в культурах проводят по мазкам из культур, которые окрашены по модифицированному методу Грама и биохимическим свойствам гонококков.
Исследования на трихомонады. Полученный материал на предметных стеклах исследуют на наличие трихомонад при изучении нативного препарата и окрашенных метиленовым синим и по Граму.
На немного подогретое предметное стекло наносят каплю теплого изотонического раствора хлорида натрия, с которой смешивают взятый материал.
Смесь накрывают покровным стеклом и исследуют под микроскопом. Влагалищная трихомонада распознается по форме тела (грушевидной, округлой или овальной), размеру, немного большему лейкоцита, характерному толчкообразному движению ундулирующей мембраны и жгутиков, которые лучше всего видно в микроскопе с темнопольным или фазово-контрастным конденсором.
Препараты, окрашенные метиленовым синим, исследуют под световым микроскопом с иммерсией. Трихомонады размещены среди слизи и клеточных элементов, оболочка - четко определенная, ядра, как правило, эксцентричные, темно-синего цвета, удлиненной формы, которая напоминает косточку сливы, протоплазма голубая, пенистая.
По Граму трихомонады окрашиваются бледно, оболочка имеет вид тонкой полосы, сетчатая протоплазма - оранжево-красного цвета, ядро - бледно-фиолетового, жгутики и ундулирующая мембрана незаметны.

Бактериологические исследования трихомонад проводятся при выращивании на жидких питательных средах.

16. Взятие материала и исследование на бледную трепонему

С целью подтверждения диагноза раннего сифилиса проводят поиск бледных трепонем в активных элементах сифилиса (эрозии, язвы, эрозированные папулы, широкие кондиломы) или путем пункции лимфатических узлов.

Опыты окрашивания бледных трепонем утратили свое практическое значение в связи с тем, что бледная трепонема плохо воспринимает анилиновые краски (откуда и название возбудителя - «бледная» трепонема). Кроме того, при окрашивании теряется очень важный дифференциально-диагностический признак бледных трепонем, позволяющий отделить их от вульгарных трепонем - это виды движения (поступательное, вращательное, волнообразное, маятникообразное, V-образное). Важной является также одинаковость размеров завитка, быстрота движения и приведенные выше виды движений. Поэтому во всех лабораториях проводят исследования бледной трепонемы в живом состоянии, используя для этого обычный световой микроскоп с темнопольным конденсором. При отсутствии такого конденсора делают затемнение кружком черной бумаги (диаметр 1,5 см), который вкладывается на нижнюю линзу развинченного конденсора так, чтобы между краями линзы и бумаги оставался свободный ободок (просвет 1,5-2 мм). Пройдя через это приспособление (конденсор), луч света принимает косое направление под острым углом в месте исследуемой капли серума, не попадает в объектив, чем достигается исследование в темном поле.

Поверхность эрозии, язвы, эрозированной папулы очищают стерильным ватным или марлевым тампоном, сухим или смоченным в изотоническом растворе натрия хлорида. Эту процедуру выполняют несколько раз, так как она имеет существенное значение в поиске бледных трепонем. Это приводит к очищению ячейки от чешуи, гноя, кровянистых корочек и оказывает содействие устранению сапрофитных трепонем, которые находятся на поверхности, тогда как бледная трепонема является внутритканевым паразитом. Потом прожаривают и охлаждают платиновую петлю и проводят ею по поверхности подозрительного элемента до появления серума, каплю которого переносят на предметное стекло, на которое предварительно нанесена капля изотонического раствора натрия хлорида (надо брать материал не на одно стекло, а на несколько). Это предметное стекло должно находиться в лотке, и с этими препаратами надо быть очень осторожными, так как это инфекционный материал.
Капли изотонического раствора натрия хлорида надо делать небольшими посреди стекла, чтобы предотвратить загрязнение лотка, рук инфекционным материалом. Каплю взятого материала покрывают покровным стеклом размером 18x18 мм параллельно предметному стеклу, чтобы не порезать руки, не размазать материал по стеклу, не загрязнить руки, лоток. Осторожно прижимают покровное стекло к предметному стеклу спичкой для выдавливания пузырьков воздуха и немедленно доставляют в лабораторию для проведения исследования.

Исследование проводится под темнопольным конденсором (объектив х40, окуляр х10-15). На поверхность конденсора наносят каплю вазелинового масла или каплю воды. Сверху на предметный столик помещают препарат и рассматривают его. На темном фоне можно увидеть большое количество разных клеточных элементов и среди них - бледную трепонему, которая имеет вид светлых штопорообразных нитей. Она отличается от других трепонем характерными видами движения, равномерностью завитка. Этот способ очень простой и надежный. Только в том случае, когда видят характерные черты возбудителя (характерную особенность и все виды движений, плавность движения, равномерность завитков), делается вывод, что найдена бледная трепонема. В том случае, когда трепонемы есть, но они неподвижны, выдается заключение, что найдены неподвижные трепонемы, но не утверждается, что это бледные трепонемы. Таким образом, темнопольная микроскопия позволяет рассмотреть бледную трепонему в живом состоянии и дифференцировать ее от других трепонем.

17. Приготовление темного поля по Архангельскому

В 1934 г М П. Архангельским было предложено использовать обычный конденсор микроскопа, вставляя в него кружок черной бумаги. Для вырезывания кружка удобно пользоваться бумагой, в которую упаковывают светочувствительные фотопластинки и фотобумагу. Кружок имеет четыре выступа, которые, упираясь в металлическую оправу линзы, обеспечивают центральное положение кружка и равномерный просвет,щели вокруг него. Правильный подбор величины щели, окружающей бумажный кружок, имеет существенное значение. Следует вывернуть нижнюю линзу конденсора и вырезать кружок черной бумаги по величине этой линзы, а затем, оставляя выступы, срезать с краев полоски в 2—2,5 мм шириной. Нижняя линза вместе с кружком на ней ввертывается в конденсор. При малой величине щели будет проходить недостаточно света, и все поле будет непроницаемо темным. При чрезмерно большой величине щели будет проходить много света, поле будет светлосерым и на нем нельзя отчетливо наблюдать живые микроорганизмы. В качестве источника света можно пользоваться осветителем с электрической лампочкой в 150 ватт. Более пригодны электрические лампы с нитью накала в виде спирали, а не в виде звезды, так как сосредоточенный источник света, давая меньшее рассеивание, позволяет легче установить необходимое темное поле. Из современных осветителей лучшими следует признать те, которые используют «точечные лампы». Особенность осветителя с точечной лампой состоит в том, что источником света является маленькая дуга Петрова, которая образуется между двумя вольфрамовыми шариками. Электрическая дуга накаливает вольфрамовый шарик добела, это создает интенсивный пучок параллельных лучей, создающих наилучшее освещение препарата. При отсутствии осветителя можно пользоваться электрической лампочкой в 100—150 ватт с колпаком. Для концентрирования световых лучей на зеркале микроскопа следует поставить между лампочкой и зеркалом шаровую колбу емкостью в 150 мл, наполненную дистиллированной водой. Для приготовления препарата лучше пользоваться тонкими (1,0—1,2 мм) предметными и ровными покровными стеклами (0,2 мм).

Правильный подбор толщины предметного стекла имеет существенное значение для получения качества изображения в темном поле. Чистота и сохранность поверхности стекол является необходимым условием. Дефекты поверхности стекла: матовость, царапины, незаметные для глаза и не имеющие значения при работе со светлым полем, портят темное поле. Поэтому необходимо отобрать новые, не бывшие в употреблении предметные стекла, обмыть их водой с мылом, хорошо прополоскать в проточной воде, а затем досуха вытереть марлей или чистым полотенцем, не бывшим после стирки в употреблении. В качестве пробного испытательного материала можно пользоваться зубным налетом, небольшое количество которого размешивается в 0,5—1,0 мл физиологического раствора. На всех стеклах наносятся препараты этой жидкости, которые просматриваются в темном поле. Хорошие стекла, дающие ясную картину темного поля, отбираются для работы. Для получения темного поля применяется только плоское зеркало микроскопа, так как пучок световых лучей, идущих в конденсор, должен быть параллельным. Для соединения предметного стекла с конденсором применяется иммерсионное масло, которое наносят на конденсор. Предметное стекло наклонно постепенно опускается на конденсор так, чтобы капля масла, центр препарата и центр конденсора совпали. Это делается для того, чтобы избежать попадания мелких пузырьков воздуха между конденсором и предметным стеклом, что нарушает видимость темного поля. Предметное стекло закрепляется клеммой. Объектив опускается возможно ниже, почти до самого покровного стеклышка. Затем, глядя в окуляр, начинают поворачивать зеркало до появления хотя бы самого незначительного просветления. После этого начинают приподнимать тубус, пока не появятся более четко видимые световые точки и пятна. Затем опять приступают к регулировке освещения зеркалом до тех пор, пока картина темного поля окончательно прояснится и станут отчетливо видны яркоосвещенные различные объекты, находящиеся в исследуемом препарате. Пользуются объективом сухой системы х40. Если необходимо рассмотреть микроб или частицу в более увеличенном виде, то можно заменить окуляр 10 окуляром 15. После каждого исследования необходимо сейчас же вынуть и обтереть конденсор, иначе масло просочится внутрь и загрязнит линзы.

18. Биопсия кожи

Гистологическое исследование является наиболее ценным методом диагностики в дерматологии, а при некоторых заболеваниях (опухоли кожи, болезнь Дарье, ретикулез, глубокий микоз и др.) - решающим. Несмотря на это, гистологическая картина, чаще всего, только подтверждает клинический диагноз, то есть на основании морфологических изменений можно поставить только предварительный диагноз. Поэтому направление материала на гистологическое исследование патологоанатому должно сопровождаться детальным описанием клиники заболевания, а при необходимости - включать также данные дифференциальной диагностики.

В некоторых случаях биопсию кожи делают для контроля эффективности лечения.

На практике используют разные методы биопсии (иссечение скальпелем, пункция, электроэксцизия), но наиболее часто - иссечение, при котором повреждение ткани минимальное. Пункционный метод нельзя считать оптимальным, поскольку при нем возможно проникновение инфекции, кровотечение, ускорение роста ткани (активизация процесса при опухолях).
При иссечении ткани электрохирургическими инструментами сравнительно большая часть материала подвергается коагуляции и делается непригодной для исследования.

Самым надежным способом является эксцизионная биопсия. Большинство авторов рекомендует проводить иссечение в границах пораженной и нормальной кожи. Исследователи единодушны в том, что биопсированный участок должен включать подкожную основу. Материал целесообразно брать из нескольких участков пораженной кожи.

Биопсию следует считать маленьким операционным вмешательством и потому - проводить в условиях тщательной стерильности и анестезии.

Инструментами для биопсии служат скальпель, ножницы, щадящие конхотомы; необходимы также хирургическая игла, шовный материал. Для остановки кровотечения можно использовать электрохирургические наконечники, концентрированный раствор цинка хлорида или карболовую кислоту. Прежде чем взять кусочек ткани, необходимо очистить его от корок, чешуек, струпьев. После обработки операционного поля спиртом, эфиром или спиртовым раствором йода, иссекают участок пораженной кожи вместе с участком нормальной, проводят гемостаз и накладывают 2-3 шва. Биоптат помещают в обычный или специальный фиксатор (жидкость Флеминга: однопроцентной хромовой кислоты - 1 часть, двухпроцентной осмиевой кислоты - 4 части и ледяной уксусной кислоты - 15 частей; жидкость Шабо: этилового спирта восьмидесятипроцентного - 60 мл, фенола - 15 г, раствора формальдегида - 5 мл, кислоты уксусной - 2 мл). Полученный материал можно сохранять до 4 месяцев.
При меланобластоме или подозрении на малигнизацию невуса биопсию проводят в онкологических учреждениях. При этом опухоль удаляют, с захватыванием здоровой кожи в границах 3-4 см, а не иссекают только ее саму, ради избежания диссеминации новообразования.

При лепре биопсию делают под местной анестезией после соответствующей обработки кожи. Иссекают периферическую часть подозрительного на лепру элемента вместе с верхним слоем подкожной основы, после чего на рану накладывают шов. Биопсированный материал фиксируют нейтральным раствором формальдегида, жидкостью Флеминга или Шабо. При невозможности исследовать материал на месте, его направляют в отделение патоморфологии вышестоящего учреждения.

19. Методика применения примочек, повязок, компрессов, взбалтываемых взвесей, паст, мазей, пластырей, аэрозолей, лаков

Повязки применяются асептические (после маленьких оперативных вмешательств) или с лекарственными веществами (растворами, линиментами, пастами, мазями). Фиксируются повязки бинтованием конечностей, надеванием сетчато-эластического бинта на конечность, а на голове и на туловище - клеолом или липким пластырем.

Для наложения примочки бинт или марлю складывают в 6-8 слоев величиной с очаг поражения кожи (можно использовать белую хлопчатобумажную или льняную ткань в 4-5 рядов), смачивают лекарственным раствором (двухпроцентная борная кислота, однопроцентный раствор танина, раствор фурациллина, риванола и др.), слегка отжимают и накладывают на очаг поражения. Через 15-20 мин. (по мере высыхания) ткань снова намачивают. Продолжительность примочки - от 1-2 часов до нескольких дней при выраженном мокнутии очагов. Если примочка накладывается на лицо, то в ткани прорезаются отверстия для глаз, носа и рта.

Дерматологический компресс состоит из марли, смоченной в лекарственном растворе или нанесенной на нее мази, компрессной бумаги и фиксирующей повязки. От согревающего компресса дерматологический компресс отличается отсутствием утеплющего слоя (ваты).

Пасты наносят шпателем на открытую поверхность участка кожи, пораженной заболеванием, или под окклюзионную повязку.

Мази можно наносить на поверхность кожи несколько раз в день, можно втирать на протяжении нескольких минут в очаги поражения или наносить под окклюзионную повязку. Для лучшего проникновения мази в кожу используют фонофорез.

Взбалтываемые смеси перед нанесением на кожу тщательно встряхивают до получения равномерной взвеси. Повязки сверху не накладывают.

Онихолитические пластыри слегка подогревают на водяной бане до размягчения, накладывают после предшествующей 30-минутной мыльно-содовой ванночки на очаг гиперкератоза или ногтевую пластинку, кожу вокруг защищают вазелином или цинковой мазью, сверху заклеивают липким пластырем.

Фунгицидные лаки наносят на пораженные ногтевые пластинки после теплых мыльно-содовых ванночек специальными кисточками ежедневно или раз в неделю (в зависимости от вида препарата).

Медицинские клеи (БФ-5, жидкость Новикова и др.) используются при обработке микротравм (порезы, ссадины) для профилактики пиодермий. Края пореза надо плотно прижать, чтобы остановилось кровотечение, высушив поверхность марлевым тампоном или кусочком ваты, после чего смазать маленьким квачиком с клеем.

Аэрозоли наносят на очаг поражения с расстояния 25-30 см путем кратковременного надавливания на головку аэрозольного баллончика при кожных болезнях после прекращения мокнутия. Для индивидуальной профилактики венерических болезней пенные аэрозоли вводятся в уретру и влагалище с помощью специальных наконечников не позже 2 часов после случайного полового контакта.

20. Проведение отслоек и удаления ногтевых пластинок

Существует 2 метода удаления ногтевых пластинок - консервативный и хирургический.

Консервативный метод состоит в том, что пациенту на пораженную ногтевую пластинку накладывается мазь, которая «расплавляет» ее спустя некоторое время (1-2 суток). В качестве такого вещества используют чистую мочевину (мочевина чистая - 20,0) или трихлоруксусную кислоту - 10,0, воду - 10,0, свинцовый пластырь - 45,0, ланолин - 20,0, воск - 5,0).
В аптечной сети бывают готовые кератолитические пластыри «Онихолизин» и «Онихопласт».

Методика наложения: после теплой ванночки из 2-5-процентного раствора соды на протяжении 5-10 мин. на ногтевую пластинку накладывают кератоли- тический пластырь. Предварительно околоногтевые валики закрывают обычным липким пластырем, чтобы защитить от действия кератлитического вещества. Сверху каждый ноготь обматывается липким пластырем (как кукла). Через 24 часа ногтевая пластинка становится желеобразной, легко снимается пинцетом или скальпелем. В случае неудачи наложение мази можно провести повторно в том же составе еще на 1 сутки (иногда приходится эту процедуру повторять неоднократно - 3-4 аппликации).

Хирургический метод: после анестезии новокаином или лидокаином через 3-5 мин. ногтевую пластинку ножницами разрезают пополам, а половинки в разные стороны свободно вылущиваются иглодержателем. Поверхность раны обрабатывается настойкой йода. Заживление проходит около 2-4 недель.

21. Удаление контагиозного моллюска

Дата добавления: 2015-08-05