Методы антисептики 4 страница

Для того, чтобы продлить сохранение стерильности инструментов в операционных и перевязочных предложены специальные камеры (Рис.24). Эти камеры предназначены для хранения предварительно простерилизованних медицинских инструментов с целью предотвращения их вторичной контаминации микроорганизмами. Они обеспечивают постоянную готовность к работе медицинских

Рис. 24. Камера для хранения стерильных инструментов в операционных и перевязочных.

инструментов в процессе их длительного (до 7 суток) хранения. Гибель и отсутствие роста патогенных микроорганизмов достигается облучением рабочей поверхности камер жестким бактерицидным УФ-излучением. Невостребованный инструмент и материалы могут храниться в камерах в течение 7 суток и быть стерильными.

Воздушный метод стерилизации в сухожаровом шкафу

Стерилизующим агентом этого метода является сухой горячий воздух. Стерилизацию воздушным методом проводят в воздушных стерилизаторах (Рис. 25 и 26) при температуре 160 и 180^оС. Время стерилизации 150 и 60 мин соответственно. Для того чтобы стерилизация была эффективной необходимо соблюдать следующие правила:

· стерилизуемые изделия необходимо укладывать горизонтально поперек пазов кассет;

· изделия распределять равномерно;

· не перекрывать продувочные окна и решетку вентиляции;

· большие предметы укладывать на верхнюю металлическую решетку, чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха;

· загрузку воздушных стерилизаторов производить при температуре камеры 40 – 50^оС;

Рис. 25. Стерилизатор воздушный с охлаждением ГП-8 СПУ

· отсчет времени стерилизации начинается с момента достижения необходимой температуры (160 или 180^оС в зависимости от режима стерилизации);

· выгрузка производится при температуре не выше 40 – 50^оС.

Стерилизации подвергаются сухие изделия в упаковках из

оберточной бумаги. Изделия, простерилизованные в бумаге, могут храниться трое суток; изделия, простерилизованные в открытых емкостях, должны быть использованы непосредственно после стерилизации.

Контроль стерильности

Для проверки стерильности материала после автоклавирования и стерилизации изделий в сухожаровом шкафу существуют несколько методов: технический, бактериологический, термический.

Технический – проверка показателей давления и температуры в автоклаве, температуры в сухожаровом шкафу, а также размещение термометров в различных участках стерилизационной камеры и в стерилизационных коробках или пакетах. Современные конструкции стерилизаторов оснащены также записывающими устройствами, фиксирующими на специальной диаграмме температуру каждого цикла стерилизации и давление.

Бактериологический метод наиболее надежен. Берётся посев со стерильного материала и стенок бикса. Ответ можно получить только через 2 – 3 суток, в этом неудобство метода. К этому же методу относится использование неспороносной и непатогенной культуры микроорганизмов, которые погибают при определенной температуре, или биотесты, имеющие дозированное количество спор тест - культуры. Пробирки с этой культурой помещают в бикс, а после стерилизации делают посев. Результат можно получить не ранее 2 – 3 суток.

В повседневной работе возникает необходимость получить результаты контроля в ближайшие часы после проведения стерилизации. С этой точки зрения заслуживают внимания биотесты, позволяющие обнаружить наличие выживших после стерилизации микроорганизмов методом флюоресценции. Отсутствие флюоресценции свидетельствует о стерильности материала. Использование этого метода позволяет получить ответ о качестве проведенной стерилизации через 2 – 3 часа.

Рис.26. Стерилизатор воздушный ГП – 40 – 3 (Швейцария).

Термические методы контроля стерильности. Эти методы основаны на свойствах кристаллических веществ плавиться или менять цвет при определенной температуре. Для контроля стерилизации в автоклаве используют вещества, точка плавления которых – 110 – 130^оС (порошкообразная мочевина-132^оС, бензойная кислота-121^оС, антипирин -113^оС, сера - 111-120^оС), а бензойная кислота при температуре 120^о приобретает еще и фиолетовую окраску. Пробирки с небольшим количеством этих веществ кладут в середину каждого бикса.

Для контроля стерилизации в сухожаровом шкафу используют сахарозу, тиомочевину - точка плавления 180^оС, янтарную кислоту - точка плавления 180 – 192^оС.

Тем не менее, этот метод контроля нельзя считать достоверным. Многие авторы указывают, что при удовлетворительных результатах термического контроля с помощью названных индикаторов, бактериологический контроль в ряде случаев выявляет неудовлетворительный результат стерилизации. Так по данным Сироко И.А. (1972 г.) при расплавленной бензойной кислоте рост тест - культуры отмечался в 12% случаев. Это объясняется тем, что переход, используемых для контроля стерилизации веществ в другое агрегатное состояние, не дает представления о продолжительности воздействия температуры, при которой происходит их плавление.

В настоящее время для контроля режимов стерилизации используются индикаторы интегрированного действия: ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180 фирмы “Винар”, представляющие собой полоски бумаги, на одной стороне которых нанесен индикаторный слой и изменяющие окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всего процесса. Каждый индикатор применяется лишь для определенного режима стерилизации. Индикаторы ИС – 120 и ИС- 132 предназначены для одновременного контроля температуры, времени стерилизации и наличия пара в паровых стерилизаторах, а индикаторы ИС – 160 и ИС – 180 – для контроля режимов в воздушных стерилизаторах. Эталон представляет собой полоску бумаги, окрашенную с одной стороны в цвет, с которым доложен совпадать цвет индикатора при условии соблюдения режима стерилизации. Отработанные индикаторы подклеивают в журнал учета стерилизации. Материал разрешается использовать, если цвет всех индикаторов, заложенных в камеру стерилизатора, соответствует или чуть темнее цвета эталона. Если цвет индикатора в какой либо точке стерилизатора светлее эталона, использование всей партии изделий запрещается.

Индикаторы изготавливаются в соответствии с ТУ 480 – 153 001 (согласовано с МЗ РФ 10 июня 1993 г.)

Разработки последних лет – индикаторы серии «МЕДТЕСТ», «СТЕРИКОНТ», «СТЕРИТЕСТ», «ИНТЕСТ», «СВИДЕТЕЛИ». Индикаторы разработаны на основании требований стандарта ГОСТ Р ИСО 11140 «Стерилизация медицинской продукции. Химические индикаторы».

Индикаторы «СТЕРИКОНТ» предназначены для контроля паровой или воздушной стерилизации в камере стерилизатора, снаружи стерилизуемых упаковок.

Индикаторы «СТЕРИТЕСТ» - для контроля стерилизации внутри стерилизуемых упаковок.

Индикаторы серии «ИНТЕСТ» - для контроля паровой стерилизации как в камере стерилизатора, так и внутри стерилизуемых упаковок.

Индикаторы серии «СВИДЕТЕЛЬ» - для визуального отличия упаковок, прошедших стерилизацию, от нестерилизованных. Применяются при всех видах воздушной и паровой стерилизации.

Индикаторы «Медтест» предназначены для всех видов стерилизации (многопараметровые, класс 4 по ГОСТ Р ИСО 11140 -1-2000), а индикаторы серии СТИК - «Медтест» предназначены для контроля соблюдения параметров инфракрасной стерилизации.

Стерилизация растворами химических веществ

Стерилизация растворами химических веществ применяется в тех случаях, когда невозможно использовать изложенные выше методы стерилизации. Серьезным недостатком этой методики является необходимость промывать изделия после стерилизации физраствором или дистиллированной водой, что может привести к вторичному обсеменению микроорганизмами.

Для химической стерилизации используются растворы перекиси водорода 6% (время стерилизации 360 мин, температура не мене 18^оС), 1% раствор дезоксона (время стерилизации 45 мин), сайдекс (время стерилизации от 4 до 10 часов при температуре 21^оС) и другие средства (см. раздел «Антисептика»).

Для стерилизации инструментов и оптических приборов (лапароскоп, торакоскоп, цистоскоп и др.) может быть использован 0,5% спиртовый раствор хлоргексидина биглюконата или раствор первомура.

Стерилизация газами

Стерилизация газами осуществляется в специальном газовом стерилизаторе. Инструменты, подлежащие стерилизации, помещают в камеру, которая заполняется окисью этилена или смесью его с бромистым метиленом. Время стерилизации от 6 до 48 часов в зависимости от температуры в камере.

Использовать пары формалина для газовой стерилизации и в параформалиновых камерах в настоящее время не рекомендуется из-за недостаточной эффективности метода.

В последнее время для газовой стерилизации используется озон. Созданы специальные озоновые камеры (Рис. 27), которые состоят из генератора озона и рабочей части, где размещаются стерилизуемые объекты. Следует иметь в виду, что озон окисляет металлы и разрушает неметаллические предметы.

Рис. 27. Озоновые стерилизаторы

Стерилизующим агентом может быть газовая плазма паров перекиси водорода, которая образуется под действием электромагнитного поля. Стерилизатор работает в двух режимах: 1-й - обычный режим - 55 мин, второй - для стерилизации полых изделий и эндоскопов - 72 мин. Температура стерилизации более 46^оС. Широкое применение этого метода тормозится его высокой стоимостью.

Радиационный метод стерилизации

Для стерилизации изделий медицинского назначения из термолабильных материалов используются холодные методы. Стерилизующими агентами являются ионизирующие гамма- и бета - излучения. Используемая доза радиации значительная – 20–25 мкГр, что опасно для персонала и требуется соблюдение строгих мер безопасности. Этот метод применяется в промышленности. Инструменты и прочие материалы стерилизуются в специальных герметических упаковках, стерильность в которых сохраняется до 5 лет. Метод удобен и выгоден. Лучевая стерилизация не приводит к изменению свойств стерилизуемых материалов.

3.4. Стерилизация материалов, инструментов и других изделий медицинского назначения

Стерилизация инструментов и изделий медицинского

назначения

Стерилизация изделий медицинского назначения состоит из 3 этапов: дезинфекции, предстерилизационной обработки и стерилизации.

Дезинфекции подлежат все инструменты и приборы, используемые во время операций и хирургических манипуляций. Весь использованный инструментарий, шприцы, иглы, катетеры, зонды и т. п. погружают в емкость с 3% раствором хлорамина или 0,5% раствор дезоксона, где их моют, промывая просветы игл, а затем погружают в такой же раствор на 60 мин. С этой же целью используют 0,5% раствор хлорной извести, 6% раствор перекиси водорода и другие препараты (см. раздел “Антисептика”).

Предстерилизационная обработка (второй этап обработки инструментов, ОСТ-42-21-2-85) проводится после дезинфекции и отмывания остатков дезинфицирующего средства чистой проточной водой. Цель её – удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остатков лекарственных препаратов. Для предстерилизационной обработки используются различные средства: растворы, содержащие перекись водорода и моющее средство (Лотос, Лотос-автомат, Астра и т. п.), которые готовятся перед применением. Для снижения коррозионного действия этих препаратов целесообразно использовать ингибитор коррозии – 0,14% олеат натрия. Разъемные изделия подвергают обработке в разобранном виде, а при замачивании полностью погружают в раствор так, чтобы были заполнены все просветы и полости. Мойку осуществляют с помощью ерша, тампонов, тканевых салфеток, каналы промывают с помощью шприца.

Рис. 28. Автоматы для мойки и дезинфекции инструментов

Этапы предстерилизационной обработки ручным способом:

1. Ополаскивание под проточной водой – 0,5 мин.

2. Замачивание в моющем комплексе при температуре 40-55^оС – 15 мин.

3. Мойка в моющем комплексе при помощи ерша – 0,5 мин.

4. Промывание изделий под проточной водой: а) после использования “Биолот” – 3 мин, б) после использования “Прогресса” и “Марички” – 5 мин, в) после использования “Астры”, “Лотоса” – 10 мин.

5. Промывание дистиллированной водой –0,5 мин. или кипячение

в течение 5 мин. в специальной емкости.

6. Сушка горячим воздухом при температуре 80 – 85^оС до полного исчезновения влаги в воздушном стерилизаторе при открытом вентиляционном отверстии.

Предстерилизационная обработка является важнейшим этапом современной стерилизации, именно от качества предстерилизационной обработки в значительной степени зависит надежность стерилизации. Ручная предстерилизационная очистка трудоемка, малоэффективна, отвлекает большое количество медперсонала. В связи с этим, по мнению многих авторов, крайне необходимо оснастить лечебные учреждения современным моечным оборудованием для предстерилизационной обработки.

Рис. 29. Ультразвуковая мойка.

В настоящее время существуют средства, позволяющие проводить дезинфекцию и предстерилизационную очистку инструментов в один этап, используя препараты: лизетол, виркон, пироксимед и др. Применение этих средств позволяет сделать процесс обработки инструментов менее трудоемким и сократить время обработки.

Промышленность выпускает устройства (Рис.28 и 30), которые обеспечивают высококачественную предстерилизационную обработку, совмещенную с дезинфекцией. Хорошие результаты дает

Рис.30.Моюще-дезинфицирую- щая машина для эндоскопов.

использование с этой целью ультразвуковой мойки (Рис. 29).

Оснащение лечебных учреждений современным моечным оборудованием для предстерилизационной обработки важнейшая задача обеспечения надежной стерилизации.

Качество предстерилизационной обработки контролируется пробами: на наличие остатков крови с помощью амидопириновой пробы. С этой целью могут использоваться также бензидиновая и ортотолуидиновая пробы.

Для определения остатков щелочных компонентов моющих средств используется фенолфталеиновая проба. С помощью азопирамовой пробы можно определить как наличие крови на инструментах, так и компонентов моющих средств.

Азопирамовая проба. Для проведения пробы используется 1,0 - 1,5% раствор солянокислого анилина в 95% спирте. Перед проведением пробы готовится рабочий раствор путем смешивания равных по объему

количеств азопирама и 3%-ной перекиси водорода. Подготовленный рабочий раствор (срок годности 1 - 2 часа) наносится на предметы. Проба считается положительной, если цвет реактива изменяется в течение первой минуты. Вначале появляется фиолетовый цвет. Переход фиолетового цвета в розово-сиреневый свидетельствует о наличии следов крови, а появление буроватого окрашивания указывает на неполное удаление моющего средства, хлорсодержащих окислителей, ржавчины (выписка из инструктивно-методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам № 28-6/13 от 26.05.88 года).

Амидопириновая проба. При постановке амидопириновой пробы о наличии остаточных кличеств крови свидетельствует немедленное, или не позже, чем через 1 минуту, появление сине-зеленого окрашивания реактива. Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 минуту, не учитывается (методические рекомендации по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения №28-6/13 от 08.06.82 года).

Фенолфталеиновая проба проводится с использованием 1% -спиртового раствора фенолфталеина. Раствор наносится марлевой салфеткой на изделие, или на изделие наносятся 2-3 капли раствора. Результат оценивается в течение 2 минут. При положительной пробе цвет реактива изменится от розового до малинового.

При положительных пробах предстерилизационная обработка повторяется.

Способ стерилизации зависит от вида хирургического инструмента или изделия.

Стерилизация металлических инструментов. Металлические инструменты стерилизуются в автоклаве, или в сухожаровом шкафу. Для стерилизации режущих инструментов используется химический метод. Приборы, снабженные оптикой (фиброгастродуоденоскопы, бронхоскопы, цистоскопы, колоноскопы и пр.) стерилизуются в газовых стерилизаторах или для этой цели используют химические антисептики, такие как хлогексидин биглюконат и др.

Стерилизация изделий из резины и полимерных материалов. Сухие резиновые перчатки стерилизуются в автоклаве. Перед стерилизацией внутри и снаружи они пересыпаются тальком для предохранения от склеивания. Между перчатками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток заворачивают отдельно в марлю или бумагу, внутрь, в ладонную часть перчатки вкладывают лоскуты марли или бумаги и в таком виде помещают в бикс. Режим стерилизации при температуре пара 120^оС, давлении 1,1 атм. - 45 минут.

Другие изделия из резины и полимерных материалов подготавливают для стерилизации, подбирая размер упаковочных материалов так, чтобы исключить перегибы изделий, У-образное или петлевое сложение. Контроль стерилизации - ИС на 120^оС.

Приказ МЗ СССР №720 от 31.07.78 г.

и №408 от 12.07.89 г.

Стерилизация изделий из стекла. Стеклянные многоразовые шприцы с пометкой «200», пробирки, чашки Петри, флаконы упаковывают в разобранном состоянии, вынимают поршни из шприцов, пробки из флаконов и пробирок и размещают их в стерилизационных укладках таким образом, чтобы они располагались открытой частью вниз. Стерилизуются изделия в автоклаве или сухожаровом шкафу.

3.5.Стерилизация перевязочного материала и белья

Подготовка перевязочного материала и белья к стерилизации

В последние годы очень серьезно обсуждается вопрос о применении одноразовой медицинской одежды и белья. Существует требование Минздрава РФ о переходе на одноразовую одежду для хирургического медперсонала и белье для послеоперационных больных.

Рис. 31. Комплект белья для операции универсальный из двухслойного нетканого материала одноразового использования.

АВ-простыни с адгезивным краем; БЕ-простыни на операционные столы; Г-салфетки с адгезивным краем; Д- полотенца.

Актуальность проблемы обусловлена в основном довольно высоким уровнем раневой инфекции в послеоперационном периоде, причем в большинстве случаев (85%) источником микроорганизмов является сам пациент (50% наблюдений) и медицинский персонал (35%),а также неуклонным ростом заболеваемости медицинских работников такими инфекционными заболеваниями, как вирусные гепатиты В и С, ВИЧ-инфекции. Заражение персонала происходит при контакте кожи и слизистых с различными биологическими жидкостями и тканями зараженного пациента.

Для профилактики инфицирования медицинского персонала необходима защита не только кожи, но и всего тела, а хирургическое белье (операционные материалы), предназначенное для обеспечения стерильности операционного поля, не должно допускать проникновения микроорганизмов в рану. Медицинская одежда и белье не отвечают этим требованиям.

Барьерные возможности хлопчатобумажного операционного белья крайне ограничены. Оно выделяет текстильную пыль и мелкие ворсинки, которые, пропитываясь биологическими жидкостями, становятся хорошей средой для переноса и размножения микроорганизмов, причем многократные обработки приводят к еще большему разволокнению ткани. Одноразовое хирургическое белье (Рис. 31) лишено этих недостатков. Тем не менее, уровень обеспечения медицинской одеждой и бельем одноразового использования, по данным экспертов, в России составляет всего 0,32%.

К операционному белью относятся медицинские халаты, застегивающиеся сзади, простыни, полотенца, салфетки, колпачки и маски.

Перевязочный материал, который используется в операционной и при перевязках – это белая гигроскопическая марля и вата.

Марлю складывают квадратами длиной 1 м и шириной 70 - 80 см. Из нее готовят салфетки - большие, средние и малые. Из одного куска марли можно сделать 2 больших, 4 средних и 6 малых салфеток. При изготовлении салфеток края всех отрезанных кусков обязательно загибаются внутрь на 2 см, складывают пополам вдоль поперечной, а затем и продольной нити. Салфетки используют для защиты кожи, осушения раны, наложения повязок.

Для остановки кровотечения, удаления крови и гноя применяют тампоны большие, средние и малые. Самые узкие из них - турунды.

Большой тампон готовится из большой салфетки с загнутыми краями, которая дважды складывается пополам. Затем по длине она складывается так, чтобы одна половина была длиннее другой.

Образовавшуюся полоску складывают еще раз - пополам и выступающий край заворачивают на тампон.

Средний тампон делается из средней салфетки Для его изготовления заворачивают край марли на 3-5 см, складывают поперек, а затем вдоль..

Малый тампон начинают готовить с подворачивания на 1 - 2 см одного из коротких краев марли, затем подворачивают внутрь с некоторым заходом друг на друга более длинные края с повторным складыванием их пополам в продольном и в поперечном направлениях.

Турунды готовятся из полосок марли или бинта шириной 5 см и длиной до 40 - 50 см. Конец бинта заворачивают внутрь, а края складывают навстречу друг другу до соприкосновения. Для образования ровного края сложенную полоску в натянутом состоянии прокатывают через край стола, затем её складывают еще раз и вновь протягивают через край стола. Полученную полоску наматывают на три пальца, а свободный край подворачивают внутрь образовавшегося кольца.

Для осушивания ран от крови и гноя применяют марлевые шарики, которые готовятся из кусочков марли 12 х 12 см. Их загибают к середине, обертывают вокруг пальца и протаскивают свободный конец в середину образовавшейся трубочки. Они укладываются в марлевые мешочки по 50-100 штук.

Вата готовится в виде кусков размером 33 х 20 см или в виде лент шириной 30 см и длиной до 1,5 метров, свернутых рулоном. Из гигроскопической ваты иногда готовят ватные тупферы путем наматывания кусочка ваты на деревянную палочку длиной 15- 20 см. В настоящее время они применяются редко.

Укладка перевязочного материала и операционного белья в биксы для стерилизации

Существуют следующие виды укладки материала в биксы.

Универсальная (секторальная) укладка используется в хирургических отделениях небольших больниц. В один бикс укладываются все материалы, необходимые для выполнения типичных операций, чаще экстренных, таких как аппендэктомия, грыжесечение и т. п. (простыни, халаты, перевязочный материал и т. д.), причем стерилизационная емкость разделяется на сектора; в каждый из них закладываются разные виды изделий и по одному внутреннему индикатору ИКПС-ВН/01 в укладку каждого сектора.

Специализированная (видовая) укладка используется для операционных с большим объемом работы. В каждый из биксов укладывается только один вид материала - в один бикс только халаты, в другой – простыни и т. д.

При стерилизации пористых изделий (простыни, халаты и т. п.) в стерилизационную коробку закладывается не менее 3 индикаторов ИКПС-ВН/01 «Медтест», размещая в середине стерилизуемых изделий. При стерилизации перчаток индикаторы размещаются в ладонной части внутри перчатки. В других резиновых изделиях индикаторы размещаются по мере возможности, но так, чтобы они легко удалялись.

При стерилизации изделий из стекла или металла индикаторы закрепляются на внутренней стороне упаковки.

Целенаправленная укладка используется для выполнения, конкретно, какой либо одной из больших плановых операций, например, укладывается весь материал, необходимый для пульмонэктомии, резекции желудка и т.п. В каждый вид закладки помещается внутрь по 1 внутреннему индикатору, причем в закладках одной стерилизационной коробки должно быть не менее 3 индикаторов, один из которых расположен в центральной закладке и 2 в боковых, близких к стенкам стерилизационной коробки.

Перед укладкой медицинская сестра должна проверить целость белья и соответствующим образом сложить его. Халаты складываются рукавами внутрь и не туго скатываются в рулон. Простыни загибают по краям на 50 см, затем складывают вчетверо вдоль и не туго скатывают, начиная с не загнутого конца.

Полотенца и салфетки складывают вчетверо.

Укладка белья в биксы производится так, чтобы каждую вещь, каждый пакет или пачку можно было взять отдельно, не трогая остальные.

Дно и стенки бикса выстилают простыней, концы которой размещаются снаружи. Аккуратно сложенное белье укладывают секторально в вертикальном положении умеренно плотно, руководствуясь правилом «…если между вертикально уложенными слоями белья свободно проходит кисть руки, белье уложено правильно».

Материал укладывают рыхло, чтобы обеспечить свободное прохождение пара. После того как бикс заполнен, края выстилающей его простыни подгибаются внутрь.

Стерилизация перевязочного материала и белья осуществляется в автоклаве. Режим стерилизации: давление 2 а, температура – 132,9^оС, время стерилизации 30 мин.

3.6.Подготовка медицинского персонала к работе в операционной

Обработка рук хирурга

Подготовка рук. Подстригают ногти, очищают подногтевые пространства, затем моют руки проточной теплой водой. При мытье рук нежелательно использовать твердые мыла, поскольку их остатки могут “залипать” на коже и быть местом скопления микроорганизмов, снижая эффект обработки. Твердые мыла содержат калиево-магниевые соединения, нейтрализующие кислотность кожи и снижающие её естественные защитные свойства. Проникая в поверхностные слои кожи, эти соединения приводят к “засаливанию” и набуханию эпидермиса и последующей его десквамации. В результате частого, постоянного использования мыла происходит снижение антибактериальных свойств и нарушение функций кожных покровов, а затем их деструкция.

Щетки рекомендуется использовать один раз в сутки, перед началом работы, только для обработки ногтей.

К современным препаратам по уходу за кожей относятся следующие средства:

Ваза - пена - пеномоющее средство для ухода за кожей, оказывающее питательное и увлажняющее действие. Не содержит щелочей, сохраняет естественный кислотный баланс кожи, действует дезодорирующе. Применяется с водой и без воды.

Ваза-софт - жидкое антибактериальное моющее средство для мытья кожи. Применяется для гигиенической обработки рук. Активно в отношении грамположительных и грамотрицателных буктерий, не содержит щелочных компонентов, не вызывает раздражения кожи и аллергических реакций.

Майола-Н5-крем – профессиональный высокоэффективный антибактериальный крем для ухода за кожей рук и тела. Действует как антибактериальное и дезодорирующее средство.

Эземтан - безмыльный шампунь; моющий и дезинфицирующий препарат. Универсальное моющее средство на основе ПАВ, ароматизаторов. Подавляет бактериальную и грибковую флору.

Согласно европейскому стандарту (ЕН) существуют 3 уровня обработки рук.

Социальный уровень (бытовой) – мытье несильно загрязненных рук мылом с водой в течение 10 – 30 секунд.

Гигиенический – более эффективный метод уничтожения микрофлоры включает мытье рук с мылом и (или) обработку рук антисептиком.

Хирургическая обработка рук. Руки поочередно намыливают мылом до верхней трети предплечий и, не выпуская мыла из рук, смывают пену теплой проточной водой, кисти при этом должны быть выше локтей, чтобы грязная вода стекала от кисти к локтям. Мытье рук продолжается до тех пор, пока пена и смывающая ее вода не станет абсолютно чистой. Затем хирург просушивает руки стерильным полотенцем или салфеткой. Этот метод мытья рук должен предшествовать современным методам обработки антисептиками, рекомендованными приказом МЗ РСФСР 720-78 г. (раствором хлоргексидина и первомуром и др.).

Обработка рук хирурга 0,5% раствором хлоргексидина

биглюконата (гебитана)

Дата добавления: 2015-07-20