Читайте также:
|
|
Функционирование белков, связанных с мембраной, часто зависит от локальной вязкости их липидного микроокружения. Активность многих мембранных ферментов снижается при возрастании вязкости (снижении текучести) липидов мембраны. Как обсуждалось в подразд. 8.4.1.1, ферментный белок должен иметь возможность изменять свою конформацию во время катализа. Для этого нужно, чтобы могли перемещаться и окружающие его молекулы липидов. Если липидная фаза обладает низкой вязкостью, то изменения конформации фермента не требуют больших затрат энергии. При высокой вязкости липиды необходимо локально расплавить, для чего требуется дополнительная энергия. Температура плавления липидов должна устанавливаться на таком уровне, при котором поддерживается их оптимальная текучесть в физиологическом диапазоне температур. Следует, однако, помнить, что текучесть мембраны не должна быть чрезмерной, так как в слишком жидком липидном бислое может произойти дезинтеграция многокомпонентной системы.
Связь температурной зависимости активности локализованного в мембране фермента с температурой плавления липидного бислоя мембраны может быть продемонстрирована с помощью графика Аррениуса — зависимости логарифма константы скорости ферментативной реакции от обратной величины абсолютной температуры 1/Т (рис. 8.26).
Рис. 8.26. Кривые Аррениуса (зависимость логарифма константы скорости реакции от величины, обратной абсолютной температуре) для локализованного в мембране фермента (по П.Хочачка, Дж. Сомеро, 1988, с изменениями).
Точки перегиба на кривых (Тпл) отражают температуры фазовых переходов мембранных липидов. У организмов, адаптированных (акклимированных) к холоду (1), фазовый переход липидов происходит при более низкой температуре, чем у организмов, адаптированных к теплу (2). Различия в температурах фазовых переходов связаны с различиями в липидном составе их мембран, например, в степени ненасыщенности жирных кислот или в длине ацильных цепей и т.д. Из наклона отрезков прямых линий можно рассчитать энергии активации Еа ферментативной реакции выше и ниже температуры фазового перехода
Такая зависимость выражается отрезком прямой линии, так как
что следует из уравнения (8.3). Точки перегиба на графиках отражают изменения свойств липидов. При температуре фазового перехода наклон прямой линии резко меняется. Из наклона для данного температурного диапазона может быть рассчитана энергия активации ферментативной реакции. При температурах более низких, чем температура фазового перехода, энергия активации выше, так как для конформационных изменений белка необходимо дополнительно разорвать некоторые слабые химические связи в липидах, находящихся в гелеобразном состоянии. При температурах более высоких, чем температура фазового перехода, липиды находятся в жидкокристаллическом состоянии и требуется меньше энергии для конформационных изменений белка. При акклимации к холоду происходит сдвиг точки перегиба на графиках, отражающий смещение температуры фазового перехода к более низким значениям. Это связано с изменением химического состава мембраны — с включением в состав липидов ЖК, имеющих меньшее число углеродных атомов и большее число ненасыщенных связей. Повышение устойчивости к теплу обусловлено возрастанием вязкости (снижением текучести) липидного бислоя и стабилизацией взаимодействий между компонентами мембран.
Тепловые повреждения приводят к дезорганизации процессов, протекающих в мембранах. В частности, в тилакоидах нарушается механизм переноса энергии: блокируется перенос энергии от хлорофилла а к хлорофиллу b и изменяется распределение энергии между ФСII и ФС1. В этих условиях возрастает флуоресценция хлорофилла, что объясняется следующим образом. Свободный хлорофилл флуоресцирует очень сильно. В интактных хлоропластах флуоресценция низка, так как энергия возбуждения хлорофилла улавливается реакционными центрами. Наблюдаемые in vivo при тепловом воздействии усиление флуоресценции и тесно коррелирующее с ним подавление фотосинтеза связаны с распадом хлорофилл-белковых комплексов и переходом хлорофилла в свободное состояние (рис. 8.27).
Рис. 8.27. Влияние температуры выращивания и температуры проведения эксперимента на скорость фотосинтеза при нелимитирующем освещении 04) (по Bjorkman et al., 1980) и интенсивность флуоресценции листьев (Б) (по Raison et al., 1980) у Nerium oleander.
Растения были акклимированы к 20 и 45 °С. Скорость фотосинтеза выражена в наномолях поглощенного СО2 на 1 см2 поверхности листа в 1 с
Температурный диапазон, в котором происходит усиление флуоресценции и снижение скорости фотосинтеза, зависит от того, к какой температуре были акклимированы или адаптированы растения. Пустынные растения сверхустойчивы к высоким температурам. Они характеризуются также высокой термоустойчивостью процесса фотосинтеза и термостабильностью тилакидных мембран, что в первую очередь связано с особенностями химического состава и структуры их липидного бислоя.
Дата добавления: 2015-07-14; просмотров: 127 | Нарушение авторских прав
<== предыдущая страница | | | следующая страница ==> |
Температурозависимые модификации липидного бислоя мембран | | | Дегидратация клеток как механизм, предотвращающий внутриклеточное образование льда |