Читайте также: |
|
Когда клетки организмов подвергаются воздействию низких температур, липиды их мембран становятся более вязкими, однако эти организмы способны увеличивать текучесть мембран посредством образования двойных связей (десатурации) жирных кислот мембранных липидов. Гипотеза о восприятии сигналов о снижении температуры демонстрируется на представленной ниже блок-схеме.
При снижении температуры уменьшается текучесть мембран, что воспринимается мембраносвязанным сенсором. Сигнал об изменении температуры передается через гипотетические переносчики к промоторам генов десатураз. Вследствие этого индуцируется экспрессия этих генов, что приводит к усиленному синтезу десатураз в клетке и к ускорению синтеза полиненасыщенных ЖК в мембранных липидах. В конечном итоге восстанавливаются исходная текучесть мембран и физиологическая активность связанных с ними ферментных систем.
Эта гипотеза была экспериментально подтверждена на клетках цианобактерии Synechocystis (далее Synechocystis), которая имеет четыре гена, кодирующие различные десатуразы жирных кислот:
ü desC (Δ9-десатураза),
ü desA (Δ 12-десатураза),
ü desB (ωЗ-десатураза),
ü desD (Δ6-десатураза).
Среди этих четырех генов три (desA, desB и desD) индуцируются низкими температурами. Было установлено, что индукция генов десатураз зависит не от абсолютной температуры, а от разницы температур преадаптации и индукции. Так, если клетки выращивали при пониженных температурах, то они характеризовались повышенным содержанием полиненасыщенных жирных кислот и индукция генов десатураз наблюдалась при более низких температурах, чем в клетках, выращенных в нормальных температурных условиях.
Роль текучести мембран в регуляции экспрессии генов десатураз была показана в опытах с прямым насыщением водородом двойных связей между атомами углерода в жирных кислотах мембранных липидов (гидрогенизация), проводимой при нормальной температуре. Таким способом текучесть цитоплазматической мембраны была снижена при нормальной температуре роста клеток in vivo. Гидрогенизация привела к активации транскрипции гена desA, причем степень активации была идентичной той, которая наблюдалась при снижении температуры (рис. 4). Поскольку и каталитическая гидрогенизация при нормальной температуре и снижение температуры окружающей среды приводили к снижению текучести мембран и активации экспрессии гена десатуразы, вероятно, что изменение температуры воспринимается клеткой за счет изменения текучести цитоплазматической мембраны, в результате чего в клетке возникает сигнал, приводящий к активации экспрессии генов десатураз.
Рис. 4. Виляние снижения температуры и гидрогенизации липидов мембран на экспрессию гена desA, кодирующего десатуразу.
Вероятно также, что сенсор этих изменений локализован в цитоплазматической мембране. При изменении физических свойств мембраны сенсорный белок в мембране может менять конформацию и/или проходить через циклы фосфорилирования-дефосфорилирования в качестве первичных событий при передаче внутрь клетки сигнала об изменении температуры. Исследователи предположили, что сенсорный белок, локализованный в мембране и запускающий экспрессию генов десатураз, может обладать свойствами гистидин-киназы как в случае некоторых описанных выше осмосенсоров (KdpD и EnvZ) или хемосенсоров, обнаруженных в Е. coli и других организмах.
Для выяснения возможной природы температурного сенсора в клетках штамма Synechocystis была проведена систематическая инактивация генов, кодирующих гипотетические сенсорные гистидин-киназы (всего 43 гена).
Таким способом были идентифицированы две гистидин-киназы, инактивация которых приводила к утрате низкотемпературной индукции промотора гена десатуразы: мембраносвязанная Hik33, растворимая Hik19.
Кодируемый геном hik33 белок Hik33 имеет (рис. 5):
Ø консервативный гистидин-киназный домен на карбоксильном конце (С-конец),
Ø два трансмембранных домена в амино-концевом участке (N-конец молекулы),
Ø специфический линкер (последовательность аминокислот, связывающая разные функциональные участки молекулы белка),
Ø "лейциновую молнию" (последовательность аминокислот, состоящая в основном из остатков лейцина) в середине полипептидной последовательности белка,
Ø так называемый PAS-домен (сигнальная консервативная последовательность аминокислот, встречающаяся во всех группах организмов и отвечающая за восприятие изменений в освещенности, концентрации некоторых молекул и общего энергетического баланса клетки).
Рис. 5. Схематическое изображение доменов Hik33
Специфический линкер характерен для множества эукариотических сенсорных белков. Он расположен обычно между участком белка, отвечающим за восприятие сигнала, и протеинкиназой, которую принятый сигнал активирует. Предполагается, что уплотнение мембраны при снижении температуры приводит к сближению димеров Hik33, что ведет к изменению конформации линкерных участков, сопровождающемуся активацией гистидин-киназы и автофосфорилированием Hik33 (рис. 6).
Рис. 6. Гипотетическая схема активации температурного сенсора – гистидин-киназы Hik33 – возможный механизм активации Hik33.
При нормальной температуре димер Hik33 находится в неактивной форме. При снижении температуры текучесть мембран уменьшается и за счет сближения молекул липидов происходит сближение трансмембранных доменов Hik33 (показано стрелками). Это приводит к конформационным изменениям на участке белка, соответствующего линкеру. В результате происходит автофосфорилирование сенсорного белка. Далее фосфатная группа передается на белок – регулятор ответа.
Дата добавления: 2015-07-08; просмотров: 120 | Нарушение авторских прав
<== предыдущая страница | | | следующая страница ==> |
Осмотический сенсор | | | Застосування циклу DO-LOOP. |