Ю. А. Привезенцев, В. А. Власов 27 страница

роста рыбы (сверх естественной рыбопродуктивности) в вырост­ных и нагульных прудах расходуется около 1,5 кг азотных и около 1,5кг фосфорных удобрений. Прирост рыбопродуктивности по­вышается пропорционально увеличению внесения удобрений до

7 ц/га.

Величина внесенного в пруд определенного количества удобре­ния, способствующего развитию собственной кормовой базы, а затем при ее потреблении получению 1 кг рыбы, называется удоб­рительным коэффициентом. Для азотно-фосфорных удобрений эта величина значительно больше, так как они содержат значи­тельно меньшую концентрацию биогенных веществ. Так, удобри­тельный коэффициент по навозу равен 40, по птичьему помету — 25, по зеленой растительности — 50.

Не все пруды одинаково положительно реагируют на внесен­ные удобрения. Условия, при которых эффективность данного ме­роприятия возрастает, представлены в начале главы. При наруше­нии этих условий происходят интенсивное зарастание прудов высшей водной растительностью, закисление воды и грунта, ток­сикозы и заморы выращиваемой рыбы.

§ 52. РАЗВЕДЕНИЕ И ИНТРОДУКЦИЯ КОРМОВЫХ ОРГАНИЗМОВ

Важной проблемой индустриальной аквакультуры является проблема кормов, особенно живых. Одним из путей увеличения естественных кормовых ресурсов и повышения продуктивности прудов является массовое культивирование живых кормов, а так­же широкое использование методов направленного воздействия на естественную кормовую базу прудов путем интродукции высо­копродуктивных водных беспозвоночных.

Живой корм, представляющий собой совокупность раститель­ных и животных гидробионтов (микроорганизмы, водоросли и беспозвоночные животные), можно получать в нужном количе­стве и в необходимые сроки. Живые корма разводят как в рыбо­водных водоемах, так и в специальных культиваторах. Наиболее перспективным в технологическом плане является метод культи­вирования водорослей и водных беспозвоночных в культивато­рах — хемостатах, турбидостатах (табл. 65).

65. Продуктивность различных беспозвоночных при разных методах выращивания

Продуктивность в сутки, г/м³

~ ' I п----- „„mimr^r^

Среда

Методы периодического культивирования

2,7-18

2,7-50

5-7

Простейшие Коловратки Коловратки

Отвар сена Бактерии

Вода Хлорелла

Вода, •... <. Дрожжи

Продолжение

Беспозвоночные	Среда	Корм	Продуктивность в сутки, г/м^!
Коловратки	Вода	Хлорелла	200-220
Моины	Вода	Дрожжи
Дафнии	Вода	Хлорелла и бактерии	'. 50-70
Метод непрерывного культивирования
Парамеции	Лозинолозинского	Бактерии и дрожжи
Коловратки	Вода	Водоросли	100-150
Коловратки	Вода	Хлорелла и бактерии	1000-2000
Коловратки	Вода	Хлорелла
Моины	Вода	Хлорелла
Дафнии	Вода	Хлорелла

При использовании метода периодического культивирования различают ряд фаз развития культуры: адаптация, когда культура приспосабливается к новым условиям, рост ее замедлен; интен­сивный рост, когда достаточно питательных веществ и еще не на­копились продукты метаболизма; стационарная фаза роста, когда число вновь образующихся организмов равно числу отмирающих; отмирание, когда вследствие накопления метаболитов число от­мирающих особей преобладает и культура погибает.

При выращивании водных беспозвоночных используют метод полунепрерывного культивирования, при котором часть культуры изымается и заменяется свежей средой. В последние годы разра­ботан метод непрерывного культивирования, когда в культиватор непрерывно вводится суспензия с кормовыми организмами. Куль­тура растет очень быстро. Постоянная концентрация клеток в по­пуляции поддерживается устойчивой концентрацией лимитирую­щего субстрата, например источников углерода, азота и других ве­ществ для микроорганизмов или корма для многоклеточных орга­низмов.

Культивирование простейших. Простейшие являются первич­ным живым кормом для самых мелких личинок рыб. Наиболее широко в качестве живого корма используют парамецию (Paramaecium caudatum) и некоторые другие виды. Парамеции — одноклеточные животные, размножающиеся простым делением клетки. В оптимальных условиях они размножаются очень интен­сивно. Питаются бактериями, микроводорослями, мелким детри­том и растворенным органическим веществом. Их можно культи­вировать в различных емкостях — бассейнах, полиэтиленовых сад­ках, аппаратах Вейса. При культивировании применяют различ­ные бактериальные, водорослевые и дрожжевые среды, например сенной настой. Один раз в 3—4 сут парамеций отлавливают из сад­ков и вносят в пруд. Продукция их составляет 15—25 r/м³ в сутки.

Все большее внимание в рыбоводстве уделяют методам про­точного культивирования. Для этих целей разработана промыш-

Рис. 105. Аппарат для проточного культивирования рачков:

; —реактор; 2—эрлифт; 3 — трубочка для сливаемой суспензии по уровню; 4— внутрен­ний стакан; 5— наружный стакан

ленная установка, основной ча­стью которой является цилинд­рический реактор (рис. 105). Дно реактора коническое, за­канчивающееся отверстиями, через которые культура поступа­ет в эрлифты, предназначенные для перемешивания корма и обогащения среды кислородом. Расход воздуха в установке 1—1,5 л/мин на 1 л культуры.

Чистую воду заряжают культурой простейших одного вида, что является одним из условий интенсивного культивирования. При непрерывном культивировании в установку постоянно подается питающая суспензия, включающая дрожжи. Оптимальная проточ-ность равна 6—10 объемам в сутки. Температура 26 "С и концент­рация корма 0,5 г/л по сухой биомассе обеспечивают непрерыв­ный рост культуры Paramaecium caudatum и ежесуточную продук­цию 20 кг/м³.

Культивирование коловраток. В качестве объектов массового культивирования используют в основном 2 вида коловраток: Brachionus calyciflorus и Вг. rubens. Коловратки размножаются партеногенетически и половым путем. Кормом для них служат во­доросли. Для разведения коловраток используют бетонные бас­сейны, садки из полиэтиленовой пленки и небольшие пруды. Од­нако их можно разводить и в установке, показанной на рис. 106, поместив в нее лампу дневного света. Освещение должно быть круглосуточное. В качестве корма для коловраток используют хло­реллу и дрожжи. Суспензию дрожжей и хлореллы следует готовить в разных сосудах. При использовании прессованных дрожжей их необходимо расходовать из расчета 0,5 кг на 1 кг сырой массы ко­ловраток, гидролизных дрожжей — 0,4 кг.

Оптимальная проточность составляет 6—10 объемов в сутки. При температуре 27 °С, концентрации корма 0,4 г/л по сухой мас­се, рН около 7,0 и освещенности 1500лк плотность составляет 16000экз/м³, ежесуточная продуктивность достигает 20 г/л, или

20 кг/м³ сырой массы.

Культивирование микроводорослей. Для рыбоводства важное значение имеют такие микроводоросли, как хлорелла, сценедес-мус и спирулина, так как они являются естественной пищей для многих видов рыб, а также могут быть использованы в качестве корма при разведении беспозвоночных.,.,,,..,.,...,.

12

6 10

Рис. 106. Схема для проточного культивирования простейших:

1 — резиновая прокладка; 2— прозрачная оргстеклянная стенка; 3— куль­тура; 4— металлическая стенка; 5— источник света; 6— трубка для залива культуры в аппарат; 7— трубка для слива культуры из аппарата; 8— систе­ма подачи углекислого газа и воздуха; 9— трубка для отвода жидкой фрак­ции пены; Л? — трубка для отвода газовой фракции из пеногасителя; 11 — сепаратор-пеногаситель; 12 — трубка для отвода пены в пеногаситель

Для разведения в промышленных масштабах из зеленых водо­рослей используют Chlorella vulgaris, Ch. pyrenoidosa, Cl. regularis, Sceredesmus acutus, из синезеленых — Spirulina platensis (табл. 66). Карп, белый толстолобик, белый амур, большеротый буффало и тиляпии охотно потребляют суспензию и сухой порошок из этих водорослей.

66. Состав сухого вещества зеленых и синезеленых водорослей по сравнению с соей, %

Компоненты	Зеленые водоросли	Синезеленые водоросли	Соя
Белок	50-56	56-62	34-40
Вода	4-8		7-10
Липиды	12-14	2-3	16-20
Углеводы	10-17	16-18	19-35
Клетчатка	3-10	—	3-5
Зола	6-10	—	4-5

Количество белка в водорослях значительно колеблется в зави­симости от условий культивирования, в первую очередь от осве-

щения. Сумма незаменимых аминокислот в хлорелле составляет 46 %. Хлорелла и спирулина имеют разнообразный состав макро-и микроэлементов. Содержание витаминов в водорослях больше, чем в овощах и фруктах.

Для массового производства микроводорослей используют от­крытые и закрытые установки, а также естественные водоемы. При культивировании хлореллы и сценедесмуса в стоячей воде урожайность составляет 250—300 кг сухого вещества с 1 га в сутки. В качестве среды используют отходы животноводческих и птице­водческих комплексов, а также бытовые и промышленные сточ­ные воды. Куриный помет в концентрации 5—10 г/л является оп­тимальным для роста Chlorella vulgaris.

При культивировании в проточной воде между двумя кюветами вместимостью 8л помещают светильник из люминесцентных ламп. Культура постоянно перемешивается воздухом, который по­дают со скоростью 2,5 л/мин на 1 л культуры. Углекислый газ по­дают со скоростью значительно меньшей, чем воздух. Один раз в сутки культуру сливают и доливают свежую питательную среду, а 2—3 раза в сутки в культиватор вносят мочевину из расчета 0,25 г/л. Ежесуточная продуктивность культуры при таком режиме состав­ляет 8 г сухой или 24 г сырой биомассы с 1 л среды.

Культивирование ветвистоусых рачков. Для кормления молоди рыб после ее перехода на внешнее питание наиболее часто ис­пользуют планктонных ракообразных, главным образом ветвисто­усых из родов Dafnia, Moina, Ceriodafnia, Chydorus и Bosmina. Их разводят методами раздельного и совместного содержания с есте­ственным кормом — водорослями.

В специальных бассейнах глубиной около 1 м создают необхо­димый режим и выращивают водоросли Scenedesmus или Chlorella. В других бассейнах культивируют ракообразных, кото­рым периодически вносят корм.

При другом методе бассейны или небольшие земляные пруды удобряют минеральными или органическими удобрениями и вно­сят культуру дафний из расчета 5—Юг на 1 м³ воды. Через 8— 10 сут добавляют новую порцию органического удобрения, а на 18—21-е сутки отлавливают размножившихся рачков.

Планктонных ракообразных можно разводить в сетчатых сад­ках, устанавливаемых в водоеме. Благодаря непрерывному удале­нию из них продуктов обмена и поступлению естественного корма из водоема удается длительное время получать суточную продук­цию около 200—300 г/м³. При использовании сетчатых садков ма­точная культура постоянно находится в садках, а молодь поступает в пруд через отверстия в сетке.

Одним из наиболее ценных кормов для молоди является Moina macrocopa. По сравнению с дафниями моины имеют меньший размер и более высокую питательную ценность. Они в зависимос­ти от условий культивирования могут переходить от однополого к

двуполому размножению, при этом в популяции появляются сам-| цы и самки. Моин разводят в бетонных или земляных бассейнах,; подкармливают кормовыми дрожжами в виде суспензии из расче- \ та 500г/м³. Последующие порции дрожжей вносят через сутки.' Созревание культуры происходит на 4—5-е сутки после внесения маточного материала. Продукция моин составляет 100—НО г/м³ ежедневно на протяжении 10—15 сут.

Существует метод массового культивирования босмин (Bosmina longirostris). Их нужно культивировать при температуре 16—22 "С, рН 6,6—7,6 и концентрации растворенного в воде кис­лорода не менее 27—30 % насыщения.

Полноценным кормом является дешевый продукт промышлен-) ной переработки хлореллы — мелкодисперсный сухой корм. Эт отходы производства эфирных масел и белкового гидролизата При зарядке 10 г/м³ на 25-е сутки культивирования босмин в чис! той культуре продукция достигает около 100 г/м³. При зарядке' 20 г/м³ аналогичный результат может быть получен на 15-е сутки \ культивирования, а на 25-е сутки продукция достигнет 180 г/м³.

Технологическая схема непрерывного культивирования рачков; включает в себя следующие звенья: кормовая суспензия — реак-' тор-сборник урожая. Известны аппараты для непрерывного куль­тивирования ветвистоусых рачков вместимостью 1 м³. В дне реак­тора расположено 28 эрлифтов. Воздух подается со скоростью 20— 25 л/мин на 1 м³. Освещенность на поверхности 1500лк. В каче­стве среды для рачков используют воду без примесей. Питательная среда готовится в специальном сосуде. При использовании в каче­стве корма хлореллы суспензию можно готовить один раз в сутки. При кормлении смешанным кормом суспензию готовят в двух со­судах. Для выведения метаболитов одновременно с питательной смесью в аппарат подают свежую воду. Моин в нем культивируют при температуре 26—28 "С, дафний — около 22 °С. Ежесуточная продукция моин составляет 500 г/м³.

Культивирование артемий. Перспективным кормовым организ­мом является жаброногий рачок артемия. Наиболее распростра­ненным в рыбоводстве видом является Artemia salina. Благодаря малому размеру, мягкому и тонкому наружному скелету и высо­кой пищевой ценности его с успехом используют для кормления молоди большинства видов рыб в первые дни их жизни. Ценность артемий заключается в том, что их покоящиеся яйца остаются жизнеспособными в течение длительного времени и в любое вре­мя года используются для массового получения стартового живого корма в виде науплиусов и декапсулированных яиц.

Артемия теплолюбива. Оптимальная температура для нее 25— 27 °С. Рачки достигают длины 18 мм и массы 6—8 мг. Они раздель­нополые (рис. 107). Размножаются половым путем и партеногене-тически. При благоприятных условиях развитие яиц полностью протекает в яйцевом мешке и самки выметывают молодь на ста-

Рис. 107. Жаброногий рачок артемия салима:

а — самец; б — самка

дни науплиуса. При ухудшении условий среды самки прекраща­ют живорождение и откладыва­ют яйца. Для использования в рыбоводстве представляют инте­рес покоящиеся яйца артемий.

Яйца заготовляют в соленых водоемах Азово-Черноморского и Каспийского бассейнов, а так­же в регионах Кавказа, Западной Сибири и Дальнего Востока. Ос­новную заготовку яиц проводят осенью. Сухие яйца хранят в темном прохладном сухом поме­щении в водо- и воздухонепроницаемой упаковке, причем такие яйца хранятся месяцами. Для более длительного хранения исполь­зуют бескислородную вакуумную упаковку или холодильники.

Яйца артемий, собранные в осенний период, имеют низкий процент выклева науплиусов и находятся в состоянии диапаузы. Только после активации яиц возобновляется их развитие

(рис. 108).

Активация процесса развития яиц, находящихся в стадии по­коя, является наиболее важным и ответственным моментом при получении науплиусов рачка. Используют различные факторы для активации яиц: воздействие света, магнитного поля, ультрафиоле­товых лучей, промораживание, перетирание яиц с речным пес­ком, применение химических реагентов (буры, соды), органичес­ких растворителей (ацетона, бутанола, этилового спирта) и др. Это позволяет повысить выклев науплиусов от 9 до 43 %.

Наиболее эффективной является активация яиц методом вы­держивания в 10—12%-ном растворе хлорида натрия в течение

Гидрат \ циста \ "Разрыв"

Начало метаболизма

Выклев

Рис. 108. Эмбриональное развитие артемий

Сухая циста

J19

1,5—2 ч. После извлечения из раствора их хранят в полиэтилено­вых мешках в течение 2—3 мес при температуре 0—5 °С. Выклев науплиусов достигает 80—90 %. Активация дегидрированных в ра­створе хлорида натрия яиц происходит также и при хранении в зимний период в неотапливаемых помещениях (минус 10...минус 25 °С). Выклев возрастает с 30 до 60—80 %. Следует отметить, что активации сухих яиц холодом не происходит.

Активацию также проводят методом воздействия кислорода, в качестве источника используя перекись водорода. Непосредствен­но в инкубационный аппарат, где находятся яйца в 0,5—3,5%-ном растворе хлорида натрия, вносят 1—3 мг/л 3%-ной перекиси (пер-оксида) водорода. После воздействия кислорода выклев науплиу­сов возрастает до 60—80 %.

Перед инкубацией влажные и дегидрированные в рассоле яйца, хранимые в морозильнике, необходимо прогреть при комнатной температуре в течение суток. Инкубацию яиц осуществляют при температуре 25—30 °С, солености 5—35 г/л (поваренная нейодиро­ванная или морская соль) и при освещенности люминесцентными лампами 1000—2000 лк. На 1 л рассола загружают 4—8 г сухих яиц. Для дезинфекции яйца в течение 1—2ч выдерживают в растворе гипохлорита (20 г/л).

Инкубацию проводят в аппаратах Вейса и ВНИИПРХ. Объем используемых аппаратов зависит от количества получаемых науп­лиусов. Во время инкубации яйца должны находиться в движе­нии, при этом создаются лучшие условия для потребления кисло­рода. Для этого используют компрессор, распылитель которого помещают в нижнюю часть аппарата. Аппараты должны осве­щаться люминесцентными лампами.

Процесс эмбрионального развития артемии продолжается I8­60 ч. Оптимальный период инкубации, при котором получают максимальное количество жизнеспособных науплиусов, равен 48ч. Науплиусы выклевываются массой 0,01—0,06мг при длине 0,3—0,6мм.

Важным техническим моментом при культивировании артемии является отделение науплиусов от пустых оболочек яиц и непро­инкубированных яиц. После прекращения аэрации пустые обо­лочки яиц всплывают на поверхность, непроклюнувшиеся яйца оседают на дно, науплиусы плавают в толще воды.

Ввиду того что науплиусы имеют положительный фототаксис, они концентрируются в освещенной части аппарата, откуда их из­влекают при помощи сифона.

Выклюнувшихся науплиусов используют для кормления личи­нок в первые часы их жизни. При хранении их в течение 1—2 сут они быстро растут и могут быть недоступны для молоди рыб. На­уплиусы в пресной воде сохраняют неподвижность в течение 1,5— 2 ч. Поэтому их необходимо давать молоди часто и небольшими дозами. Этот корм отличается высокой питательностью. Науплиу-

сы содержат 37—70 % белка, 12—30 % жира, в котором 12—13 % жирных кислот представлено полиненасыщенными кислотами.

Наряду с науплиусами для кормления личинок рыб используют декапсулированные яйца, что позволяет исключить более слож­ный и трудоемкий процесс инкубации яиц. Кормление личинок рыб высушенными декапсулированными яйцами позволяет авто­матизировать процесс. Этот корм в отличие от науплиусов может долго храниться.

Процесс декапсулирования включает несколько последова­тельных операций. Вначале готовят декапсулирующий раствор, который состоит из 96 г порошка Са(ОС1)₂, 67 г NaCO₃, разведен­ных в 1,4л воды. Можно использовать в качестве декапсулирую-щего вещества гипохлорит натрия. Раствор представляет собой со­вокупность 320мг гипохлорита (47—52 % активного хлора), 33 мл 40%-ного раствора NaOH, разведенных в 1,05 л воды.

Гидрактивные яйца помещают в приготовленный раствор и вы­держивают при постоянном помешивании в течение 7—15 мин. Декапсуляция считается законченной, когда основная масса яиц приобретает ярко-оранжевую окраску (при использовании гипо­хлорита натрия) или серую (при использовании гипохлорита каль­ция).

После декапсуляции необходимо провести дезактивацию ак­тивного хлора, содержащегося в яйцах. Для этого их на несколько секунд погружают в 0,1 н. раствор соляной или уксусной кислоты либо в 0,1%-ный раствор Ма₂8₂Оз, затем промывают в проточной воде.

Декапсулированные яйца используют для кормления личинок как в сухом, так и во влажном состоянии. Они в 2 раза легче науп­лиусов, потому их можно использовать на самых ранних этапах подращивания молоди рыб. В отличие от науплиусов яйца имеют худшую плавучесть. Их скармливают мелкими порциями для предотвращения оседания на дно емкости.

Культивирование олигохет. Для массового культивирования чаще используют белого энхитрея (Enchytraeus albidus), который в природных условиях встречается в почве прибрежных участков пресных и солоноватых водоемов. Белый энхитрей — гермафродит (размножение перекрестное). В течение жизни один червь откла­дывает до 1000 яиц. Питаются энхитреиды разлагающимся орга­ническим веществом растительного или животного происхожде­ния. Оптимальные условия для культивирования: температура 16—18 "С, влажность почвы 20—25 %, рН 6,3—6,8.

Культивирование осуществляют в специальных помещениях — олигохетниках. Для размещения энхитреид используют деревян­ные ящики площадью 0,2—0,3 м², высотой 10—12 см. Их заполня­ют мягкой почвой. Червей вносят вместе с землей из расчета 200— 250 г/м². В качестве корма используются ржаные отруби, мучные сметы, картофель, кормовые дрожжи, овощи. Корм вносят один

Воздух

Рис. 109. Культиватор живого корма:

1 — рамка, обтянутая делью (ячейка 10 х 10 мм); 2 —
распылитель воздуха; 3 — трубопровод опорожне­
ния; 4— инкубатор живого корма

Отвод воды

раз в неделю. К концу первого меся­ца биомасса червей увеличивается в

2 раза, за второй месяц — в 5—6 раз.
С 1м² грунта еженедельно можно
получать 350—420 г червей. Эффек­
тивным методом выращивания оли-
гохет является их разведение в куль­
тиваторе (рис. 109).

Подача воды

Культивирование хирономид. Ме­тод массового культивирования ли­чинок комаров сем. хирономид (Chironomus sp. p) предусматривает создание в закрытом помещении необходимых условий для про­хождения всех этапов жизненного цикла хирономуса: оплодотво­рение, откладывание яиц, питание и рост личинок, окукливание и вылет имаго. Нужны (как минимум) 2 изолированных помещения: в одном содержат маточный рой комаров и инкубируют яйца, в другом выращивают личинок.

Маточный рой выращивают при температуре 20—22 °С. Чтобы вылет комаров происходил непрерывно, зарядку яиц в специальные кюветы проводят с интервалом в 1—2 сут. Продолжительность жиз­ни комаров не превышает 3—4 сут. Яйца хирономид откладывают в эмалированные кюветы высотой 4—5 см, заполненные водой на 2— 3 см. В кюветах личинки вырастают до стадии куколки и вылета. Основную массу кладок с находящимися в них ли­чинками переносят в выростное поме­щение. В нем расположены установки для выращивания личинок (рис. 110), где в 30—40 ярусов располагают плоские кюветы. В них вносят смешанный с во­дой до консистенции сметаны чистый речной ил слоем 1,2—1,5см. Кладки с личинками равномерно распределяют по поверхности иловой массы из расчета 100—150 кладок на 1 м². Для кормления используют дрожжи, которые вносят каждые 2—3 сут из расчета от 5 г/м² в день до 45 г/м² на 10—15 сут.

Рис. 110. Установка для разведения хирономид:

/ — стойка каркаса; 2 — опора для кювет; 3 — кюветы

Выращивание личинок длится 15—18 сут. За 2—3 сут до отбора личинок содержимое кюветы просеивают через сито с ячеёй 0,7— 0,8 мм. Применение этого метода позволяет получать до 34 г личи­нок хирономид с 1 м² в сутки.

Интродукция кормовых беспозвоночных. Для повышения про­дуктивности водных биоценозов важным мероприятием является стимулирование продукции организмов второго звена трофичес­кой цепи путем введения в биоценоз продуктивных растительно­ядных беспозвоночных. Т. Б. Богатовой разработан экономичес­кий метод интродукции высокопродуктивных ракообразных в за­рыбленные выростные пруды.

В качестве основного объекта интродукции используют даф­нию магна. Сначала нужно получить чистую культуру дафнии в прудах-питомниках, садках или бассейнах. Зарядку чистой культу­ры вносят в выростные пруды за 4—5 сут до посадки в них личи­нок рыб. Одновременно вносят корм: кормовые дрожжи, навоз или другие органические вещества. Получившие преимущество перед коренными обитателями биоценоза дафнии быстро разви­ваются и заселяют водную толщу, подавляя развитие других менее продуктивных беспозвоночных. Максимальной численности и биомассы дафнии достигают через 3—4 нед после внесения их в пруды. Рыбопродуктивность прудов при интродукции дафний по­вышается в среднем на 200—230 кг/га.

Одним из перспективных объектов для интродукции в интен­сивно эксплуатируемые пруды с целью увеличения донной кормо­вой базы является водяной ослик (Asellus aquaticus), который пи­тается детритом, остатками животных и нитчатыми водорослями. Его культуру нужно вносить в пруды из расчета 1 кг/га. Рыбопро­дуктивность при этом увеличивается на 0,7—1,5 ц/га.

Разработана технология повышения естественной кормовой базы нагульных прудов путем интродукции продуктивных донных ракообразных — мизид и гаммарид, позволяющая повысить рыбо­продуктивность нагульных прудов на 2 ц/га.

Контрольные вопросы и задания

1. Каковы методы повышения продуктивности водоемов? 2. Что понимают под рыбоводной мелиорацией? 3. Каковы разновидности рыбоводной мелиора­ции? 4. Каковы факторы, определяющие качество воды? 5. Какие проводят ме­роприятия по улучшению качества воды? 6. Каково взаимодействие рН с углекис­лотой (диоксидом углерода), аммиаком и другими ионами? 7. Рассказать о мето­дах борьбы с закисным железом. 8. Каково влияние на жизнедеятельность рыб гербицидов и пестицидов? 9. Каковы роль кислорода для жизнедеятельности рыб и факторы, влияющие на его концентрацию в воде? 10. Рассказать о методах обо­гащения воды кислородом. 11. Каков метод химической аэрации? 12. В чем зак­лючается борьба с зарастанием и заилением прудов? 13. Какова роль макрофитов в биоценозе водоемов? 14. Рассказать о факторах, влияющих на интенсивность зарастания прудов макрофитами. 15. Что собой представляет биологический ме­тод борьбы с зарастаемостью прудов? 16. Каковы методы борьбы с нитчатой водо­рослью? 17. Что такое «цветение воды»? 18. Каковы методы повышения минера-

лизации ила прудов? 19. Что собой представляет летование прудов? 20. Каковы методы борьбы с сорной и хищной рыбой в прудах? 21. Рассказать о химическом методе борьбы с хищными беспозвоночными животными. 22. Что собой представ­ляет круговорот азота в водоемах; круговорот фосфора в водоемах? 23. Каким об­разом внесенные удобрения вызывают повышение естественной кормовой базы в пруду? 24. Какие условия определяют эффективность использования удобрений в прудах? 25. Каковы оптимальные нормы внесения в пруды азотно-фосфорных удобрений; нормы внесения в пруды органических удобрений и их характеристи­ки? 26. Каков принцип расчета необходимого количества внесения в пруд удобре­ний? 27. Рассказать о технологии внесения минеральных и органических удобре­ний в пруды. 28. Что собой представляет эффективность использования удобре­ний в прудовом рыбоводстве? 29. Каковы положительные и отрицательные сторо­ны внесения органических удобрений? 30. Рассказать о разведении коловраток и ветвистоусых рачков. 31. Рассказать о культивировании микроводорослей, арте-мии салина, олигохет и хирономид.

Дата добавления: 2015-08-29