Взаимовредные.

Типы взаимоотношений между организмами в ассоциациях.

Взаимополезные.

1.1 Симбиоз – тип взаимоотношений между организмами в ассоциациях, при котором совместное существование организмов взаимовыгодно. Различают различные формы симбиоза, от протокооперации – типа симбиоза, при котором совместное существование организмов взаимовыгодно, но организмы могут существовать друг без друга, до мутуализма – типа симбиоза, при котором организмы не могут существовать друг без друга.

Полезно-нейтральные.

2.1 Комменсализм - тип взаимоотношений между организмами в ассоциациях, при котором один вид организмов приобретает преимущества от совместного существования, не принося другому ни вреда, ни пользы.

Полезно-вредные.

3.1 Хищничество - тип взаимоотношений между организмами в ассоциациях, при котором особи одного вида поедают особей другого вида.

3.2 Паразитизм - тип взаимоотношений между организмами в ассоциациях, при котором один организм получает от другого питательные от другого, нанося ему вред, но не вызывая немедленной гибели.

Взаимовредные.

4.1 Антагонизм - тип взаимоотношений между организмами в ассоциациях, при которым совместное существование организмов невозможно. Например, бактерии и плесневые грибы являются конкурентами за определённый питательный субстрат. Если субстрат первыми заселяют бактерии, то они быстро размножаются, если же субстрат заселяется грибами, то они выделяют особые вещества – антибиотики, препятствующие размножению бактерий.

Методы культивирования облигатных анаэробов: принципы, аппаратура. Основные методы выращивания анаэробов. 1. Использование термостата-аэростата, содержащего специальную газовую смесь: 3-5% О₂, 10% СО₂, 85% N₂. 2. Использование анаэростата – герметичного цилиндра, заполненного газовой смесью и соединённого с манометром. 3. Использование герметичных сосудов. 4. Накрывание сред полными целлофановыми пакетами (несколько штук), внутрь пакета кладётся камппакет, содержащий реактивы, взаимодействующие при добавлении воды с образованием СО₂ и поглощением О₂ (например, бикарбонат натрия и лимонная кислота). 5. Глубинный метод посева Филдсома. 6. Глубинное засевание материала, сверху – голодный агар. 7. Выращивание анаэробов под стеклом. 8. Заливание пробирок с жидкими питательными средами вазелиновым маслом. Несвежие питательные среды (2-3 суток) надо подвергать регенерации прогреванием на водной бане в течение 20 минут для удаления воздуха. Регенерированные среды быстро охлаждают под краном до температуры 45⁰ С. Кроме того, для сорбции кислорода могут быть использованы глюкоза, аскорбиновая кислота, цистеин, кусочки ваты, пемзы. Основные среды для посева анаэробов. 1. Среда Китта-Тароцци (кусочки печени КРС + МПБ +1% глюкоза + вазелиновое масло) используется для выделения чистой культуры, определения протеолитических свойств. При росте анаэробов среда мутнеет с образованием газа и запаха. 2. Тиогликолевая среда используется для контроля стерильности крови, шовного материала, смывов с медицинского инструментария. 3. Среда Вильсон-Блера – железосульфитный агар, при росте анаэробов среда чернеет с образованием пузырьков газа. 4. Полужидкий агар на бульоне Мартена + 0,3% глюкозы + 0,1% агар-агара. 5. Полужидкие среды Гисса для определения ферментации углеводов. 6. Кровяной агар Цейсслера (3% МПА + 1-2% глюкоза + 15-20% крови) – определение гемолитических свойств. 7. Сахарный агар. 8. Стерильное обезжиренное молоко. 9. Полужидкий агар высоким столбиком – тест на подвижность. Дифференциально-диагностические среды: состав, назначение, использование. Для отличия одних видов бактерий от других на основании их ферментативной активности применяются дифференциально-диагностические среды. Например, среды Гисса, Эндо, Плоскирева и т.д. Среды Эндо, Левина, Плоскирева в чашках Петри применяется для дифференцировки бактерий кишечной группы по их способности сбраживать лактозу. Эти сред содержат питательный агар, лактозу и индикатор, изменяющий свой цвет в кислой среде (индикатор рН). Если посеять на такую среду бактерии, которые сбраживают лактозу, например, кишечную палочку, то в результате ферментации лактозы образуется кислота и индикатор изменяет свой цвет в кислой среде. Поэтому колонии кишечной палочки на таких средах будут окрашены соответственно цвету индикаторы: на среде Эндо и среде Плоскирева – в красный цвет, на среде Левина – в чёрно-синий. Если же на эти среды посеять бактерии, которые не сбраживают лактозу, например, палочки брюшного тифа, то кислота не образуется, реакции среды останется слабо щелочной и цвет индикатора не изменится. Поэтому колонии бактерий, не сбраживающих лактозу, на этих средах будут бесцветными. Среду Плоскирева можно отнести также и к элективным средам для выделения палочек дизентерии, так как эта среда содержит соли желчных кислот, задерживающие рост кишечной палочки, и краситель бриллиантовый зелёный, задерживающий рост воздушной кокковой микрофлоры. Висмут-сульфит агар – диагностическая среда для сальмонелл. При росте на этой среде сальмонелл происходит восстановление висмута, и колонии окрашиваются в чёрный цвет. Для определения сахаролитических способностей исследуемую культуру засевают в питательные среды Гисса, называемые «пёстрым» рядом. «Пёстрый» ряд Гисса содержит обычно 5 пробирок: с глюкозой, лактозой, маннитом, мальтозой и сахарозой. Среды Гисса бывают жидкими и полужидкими. Ферментация сахара с образованием кислоты определяется по изменению цвета среды. Для определения газообразования в жидкие среды опускают поплавок (трубочку, запаянную с одного конца). В процессе стерилизации поплавок заполняется питательной средой. Если ферментация сахара сопровождается образованием газа, то он вытесняет из поплавка питательную среду и поплавок всплывает. В место поплавка может быть использована поролоновая губка. Среда Олькеницкого – трёхсахарный агар с мочевиной. Одна пробирка среды Олькеницкого заменяет скошенный агар среды Гисса с лактозой, сахарозой и глюкозой. Среда готовится на основе полужидкого МПА, содержит 1% лактозы, 1% сахарозы, 0,1% глюкозы, мочевину, сульфат железа, гипосульфит натрия и индикатор. Среду после стерилизации в расплавленном виде наливают в пробирку так, чтобы получился столбик и скошенная часть. Посев производится штрихом по скошенной части и уколом в столбик. При сбраживании лактозы и/или сахарозы (содержатся в большем количестве) изменяется цвет косячка, при сбраживании только глюкозы изменяется цвет столбика, а скошенная часть остается без изменений. Образование газа определяется по наличию пузырьков в столбике агара. Культура, расщепляющая мочевину с образованием аммиака, даёт щелочную реакции. При этом происходит нейтрализация кислоты, образующейся при ферментации углеводов, и цвет среды меняется. Разложение мочевины свойственно протеям и некоторым кишечным палочкам, патогенные энтеробактерии не разлагают мочевину. Добавление сульфата железа и гипосульфита натрия позволяет изучить способность бактерий к образованию сероводорода по почернению агара в результате превращения сульфата железа в сульфид. Для экспресс - методов определения ферментативной активности микроорганизмов применяют микротестсистемы и СИБ. Микротестсистемы представляют собой контейнер из полистирола, состоящий из нескольких ячеек. Ячейки содержат высушенные питательные среды с углеводами и индикаторами рН. В каждую ячейку засевают взвесь культуры бактерий определённой густоты, в контрольные ячейки наливают физраствор. Результат учитывают после 3-4 часовой инкубации в термостате по изменению цвета индикатора. СИБ используют для идентификации семейства энтеробактерий. СИБ представляют собой диски или полоски хроматографической бумаги, покрытые защитной плёнкой из поливинилового спирта и содержащие определённый субстрат и индикатор. В пробирки с буферным или физраствором вносят полную петлю культуры или каплю густой микробной взвеси. Обожженным пинцетом помещают в пробирку диски. В контрольные пробирки культуру бактерий не вносят. Результат учитывают по изменению цвета индикатора. Для определения сероводорода диск помещают на поверхность пробирки с МПА, засеянного уколом, что позволяет одновременно определять подвижность. Во всех пробирках учитывают предварительный результат в тот же день и окончательный – через 18-24 часа. Оксидазная активность определяется путём растирания культуры на индикаторной бумажке через 30-60 секунд. Микрофлора воды, почвы, воздуха. Микрофлора почвы. Почва является крупнейшим резервуаром микроорганизмов в природе. Численность и видовой состав микробов зависит от содержания органических веществ в почве, влаги, климатических условий и т.д. Микрофлора почвы включает бактерий, простейших, вирусов, грибов. Самый поверхностный слой почвы содержит небольшое количество организмов из-за губительного действия солнечных лучей. Главная масса микробов содержится на глубине 10-20 см, на глубине – 5-6 метров почва практически стерильна. Почва постоянно загрязняется различными отбросами, выделениями, трупами человека и животных. Огромная роль в процессах самоочищения почвы принадлежит микроорганизмам. Попадая в почву, значительная часть патогенных микроорганизмов, не образующих спор, погибает. Значительно дольше в почве сохраняются анаэробные и аэробные микроорганизмы, образующие споры. Почва играет решающую роль в эпидемиологии газовой гангрены, сибирской язвы, столбняка и т.д. Микрофлору почвы исследуют для определения фекального загрязнения, например, обнаружение Streptococcus fecalis свидетельствует о свежем фекальном загрязнении. Микрофлора воды. Численность микроорганизмов в воде определяется главным образом содержанием в ней органических веществ. Грунтовые воды чище наземных, так как микроорганизмы задерживаются в почве. Численность микроорганизмов в открытых водоемах зависит от климата, времени года и степени загрязнения. По степени микробного загрязнения выделяют полисапробную, мезосапробную и олигосапробную воду. Вода играет важную роль в эпидемиологии кишечных инфекций, возбудители которых с испражнениями поступают в воду открытых водоёмов. Хотя патогенные бактерии слабо приспособлены к существованию в воде, многие из них могут длительно сохраняться в воде. Более того, в летнее время многие из них могут при благоприятных условиях размножаться в воде. Для оценки состояния микрофлоры почвы и воды используют общее микробное число (количество бактерий в единице массы или объема), коли-индекс (количество E. coli в единице массы или объема), коли-титр (минимальный объем воды или почвы, содержащий E. coli) и наличие санитарно-показательных микроорганизмов. Микрофлора воздуха. Воздух менее благоприятен, чем почва и вода для обитания микроорганизмов. В воздухе меньше органических веществ, на микроорганизмы действуют солнечный свет, высушивание. Воздух более загрязнён вблизи земной поверхности. Больше микробов в воздухе содержится летом, зимой меньше. Нормальная микрофлора воздуха представлена кокковыми бактериями, грибами. Воздух открытых пространств значительно чище воздуха закрытых помещений. Возбудители многих заболеваний передаются воздушно-капельным путём. Помимо воздушно-капельного пути передача микробов может осуществляться воздушно-пылевым путём. Находящие в слизи микробы защищены от неблагоприятного действия окружающей среды. После высыхания такие капли превращаются в бактериальную пыль. Большое значение имеет чистота воздуха в операционных, реанимационных и перевязочных. Для исследования микрофлоры воздуха используют методы осаждения и фильтрации. Для оценки состояния микрофлоры воздуха используют общее микробное число (количество бактерий в единице объема) и наличие санитарно-показательных микроорганизмов.

Дата добавления: 2015-07-25